elaine welk lopes pereira nunes - Programa de Pós

Transcrição

ELAÍNE WELK LOPES PEREIRA NUNES
CARACTERIZAÇÃO DE GERMOPLASMA, HERANÇA E IDENTIFICAÇÃO
DE MARCADORES SNP ASSOCIADOS À RESISTÊNCIA A Podosphaera
xanthii EM MELOEIRO
MOSSORÓ-RN
2014
xanthii EM MELOEIRO
Tese
apresentada
à
Universidade Federal Rural
do Semi-Árido, como parte
das
exigências
para
obtenção do grau de Doutor
em Agronomia: Fitotecnia.
Orientador: D.Sc. GLAUBER HENRIQUE DE SOUSA NUNES
MOSSORÓ-RN
2014
O conteúdo desta obra é de inteira responsabilidade
de seus autores
Dados Internacionais de Catalogação na Publicação (CIP)
Biblioteca Central Orlando Teixeira (BCOT)
Setor de Informação e Referência
N972c Nunes, Elaíne Welk Lopes Pereira
Caracterização de germoplasma, herança e identificação de
marcadores SNP associados à resistência a Podosphaera
xanthii em meloeiro / Elaíne Welk Lopes Pereira Nunes-Mossoró, 2014.
125f.: il.
Orientador: Prof. Dr. Glauber Henrique de Sousa Nunes
Tese (Doutorado em Fitotecnia) – Universidade Federal
Rural do Semi-Árido. Pró-Reitoria de Pesquisa e PósGraduação.
1. Genética. 2.Cucumis melo L. 3. Oídio 4. QTL. I. Título.
RN/UFERSA/BCOT /838-14
Bibliotecária: Vanessa Christiane Alves de Souza Borba
CRB-15/452
CDD: 576.5
xanthii EM MELOEIRO
Tese
apresentada
à
Universidade Federal Rural
do Semi-Árido, como parte
das
exigências
para
obtenção do grau de Doutor
em Agronomia: Fitotecnia.
APROVADA EM:
BANCA EXAMINADORA
D.Sc. Jean de Oliveira Souza
Bolsista PNPD/CAPES/UFPB
Prof. D.Sc. Hailson Alves Ferreira Preston
UFERSA
D. Sc. Rafaela Priscila Antonio
EMBRAPA SEMI-ÁRIDO
Prof. D. Sc. Fernando Antonio Souza de Aragão
EMBRAPA AGROINDÚSTRIA TROPICAL
Prof. D. Sc. Glauber Henrique de Sousa Nunes
(Orientador)
Ao
meu
esposo
Glauber Henrique de
Sousa Nunes.
Dedico
Aos meus pais Íris Maria Lopes Pereira e Daniel José Pereira (in
memoriam) e as minhas irmãs Eliane Welk Lopes Pereira e Elaine Welk
Lopes Pereira
Ofereço
AGRADECIMENTOS
A Deus por mais essa vitória concedida em minha vida.
À Universidade Federal Rural do Semi-Árido por mais essa formação
profissional.
À Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior (CAPES)
pela oportunidade de bolsa de doutorado sanduíche na Espanha e durante todo o
curso.
Ao Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e tecnológico (CNPq)
pela concessão de recursos nos experimentos.
Ao meu orientador D. Sc. Glauber Henrique de Sousa Nunes pelo estímulo,
confiança, paciência e apoio incondicional durante todos esses anos. Meu
agradecimento mais que especial à você. Sem palavras!
A Profa D. Sc. Selma Rogéria de Carvalho Nascimento pela amizade e
constante ajuda no laboratório de Fitossanidade.
A D. Sc. Maria Belén Picó Sirvent muito obrigada pelos seus ensinamentos,
apoio e colaboração durante minha permanência no Laboratório de Cucurbitáceas
da Universidade Politécnica de Valencia.
Meu agradecimento muito especial ao grupo de melhoramento de
cucurbitáceas do COMAV (Espanha) por ter me ajudado na tese e conhecimentos
adquiridos nesse um ano de convivência. A Eva María Martínez Pérez, Gorka
Perpiñá Martín, Cristina Esteras Gómez, e aos amigos Irene, Ana e Raúl pelas
horas de aprendizado e descontrações fora do COMAV.
A mestre Eva María Martínez Pérez pelo apoio incondicional durante todas as
fases dos experimentos em casa de vegetação e laboratório. Além de toda ajuda
sempre nos alegrava com um sorriso constante no dia a dia. A Cristina Esteras
Gómez pelo aprendizado das técnicas moleculares.
Ao amigo D. Sc. Jean Souza de Oliveira muito obrigada pela disponibilidade
de tempo, ajuda e atenção dentro e fora da faculdade.
A empresa SAKATA pelas sementes doadas para a realização da tese.
Ao D. Sc. Juan Antônio Torés e sua equipe de micologia na pessoa de Polido
e Davínia, da Estación Experimetal de La Mayora (CSCIC) em Málaga, por me
receberem tão bem em seu laboratório e os conhecimentos transmitidos que foram
fundamentais na execução da pesquisa.
Meu muito obrigada a vocês pela
disponibilidade e atenção.
Aos membros da Banca examinadora pelas sugestões para aprimorar a
qualidade da tese.
A todos do nosso grupo de pesquisa GERMEV pela imensa ajuda na
condução dos experimentos de campo; casa de vegetação e laboratório. Sem o
apoio de todos vocês não teria sido possível mais esse trabalho. Agradeço a todos
do grupo GERMEV (Dalila Regina Mota Melo, Anânkia de Oliveira Ricarte, Ana
Carolina de Assis Dantas, Isabela Rayanne Duarte Lima, Ravier Valcácer de
Medeiros, José Maria da Costa, Robson, John e aos outros membros que faziam
parte do grupo (Dinara Aires Dantas, Isaías Porfírio Guimarães, Lívia Karla
Remígio Maia, Gabriel Guimarães Costa, José Hamilton Costa Filho, Rauny
Oliveira de Souza) também que me ajudaram na multiplicação dos materiais.
Aos colegas da equipe de trabalho de campo Nanan, Alderi, Sr. Antônio,
Josivan e Raimundo.
A professora D. Sc. Jailma Suerda Silva de Lima por disponibilizar a casa de
vegetação para manutenção de isolados.
A professora D.Sc. Márcia Michelle de Queiróz Ambrósio pela ajuda na fase
final de inoculações em laboratório.
Ao final de tudo foram quatro anos de muito aprendizado. Meu profundo
agradecimento a todas as pessoas não citadas que me ajudaram. Esse apoio foi
fundamental para esse trabalho se concretizar.
RESUMO
NUNES, Elaíne Welk Lopes Pereira. Caracterização de germoplasma, herança
e identificação de marcadores SNP associados à resistência a Podosphaera
xanthii em meloeiro. 2014. 125p. Tese (Doutorado em Agronomia/Fitotecnia) –
Universidade Federal Rural do Semi-Árido (UFERSA), Mossoró-RN, 2014.
O oídio causado por Podosphaera xanthii, é a doença foliar mais importante das
cucurbitáceas no Nordeste do Brasil. O melhoramento genético para resistência é
uma das melhores maneiras de controlar esse patógeno. Os objetivos deste trabalho
foram caracterizar morfologicamente e por marcadores microssatélites acessos
resistentes de melão, estudar a herança e identificar marcadores SNP associados à
resistência nos acessos AM55-1A e C-AC-15. Cinqüenta e seis acessos de
meloeiro com diferentes origens geográficas foram avaliados para a resistência a P.
xanthii usando inoculação artificial em casa de vegetação. Os acessos resistentes
C-AC-02, C-AC-09, C-AC-15, C-AC-34 e AM55-1A posteriormente foram
caracterizados utilizando descritores morfológicos e marcadores microssatélites.
Os acessos C-AC-02 , C-AC-09, C-AC-15, C-AC-34 exibiram características da
variedade botanica momordica, enquanto o acesso AM55-1A exibiu características
da variedade botânica acidulus. A caracterização molecular confirmou os
resultados observados na caracterização morfológica. A herança da resistência em
AM55-1A e C-AC-15 em cruzamentos com a cultivar suscetível ‘Véndrantais’ foi
estudada em condições de casa de vegetação. As razões de segregação
resistência/suscetibilidade observadas nas diferentes populações (F1, F2, RC1 e
RC2) indicou herança monogênica e dominante em AM55-1A e dois genes
independentes com interação epistática duplo recessiva no controle genético em CAC-15. A população de retrocruzamento (RC1) derivado do cruzamento AM55 1A x ‘Véndrantais’ e a população F2 do cruzamento C-AC-15 x ‘Véndrantais’
foram utilizados para identificar QTLs associados à resistência a P. xanthii usando
análise de bulk segregante com 243 marcadores SNP. Dois QTLs (Pm-AM55-A_1
e Pm-A55-1A_2) foram identificados no grupo de ligação V no cruzamento
AM55-1A x ‘Véndrantais’. Foram identificados um QTL (Pm-C-AC-15_5) no
grupo de ligação V e outro (Pm-C-AC-15_9) no grupo de ligação IX .
Palavras-chaves: Cucumis melo L. Controle genético. Oídio. Marcadores
moleculares. QTL.
ABSTRACT
NUNES, Elaíne Welk Lopes Pereira. Germplasm characterization, inheritance
and identification of SNP markers associated with resistance to Podosphaera
xanthii in melon. 2014. 125p. Thesis (Doctorate in Agronomy/Crop Science) –
Universidade Federal Rural do Semi-Árido (UFERSA), Mossoró-RN, 2014.
Powdery mildew, caused by Podosphaera xanthii, is the most important foliar
disease of cucurbits in the Northeast Brazil. Breeding for resistance is one of the
best ways to control this pathogen. The objectives aims these work were to
characterize morphologically and by microsatellites markers resistant accessions of
melon, to study the inheritance and to identify SNP markers associated to
resistance in the accessions AM55-1A and C-AC-15. Fifty-six melon plant
accessions with different geographical origins were evaluated for resistance to P.
xanthii using artificial inoculation procedure under greenhouse conditions. The
resistant accessions C-AC-02, C-AC-09, C-AC-15, C-AC-34 and AM55-1A were
characterized with morphological traits and microsatellites markers.
The
accessions C-AC-02, C-AC-09, C-AC-15, C-AC-34 exhibited characteristics of
momordica botanical variety while the accession AM55-1A exhibited
characteristics of acidulus botanical variety. The molecular characterization
confirmed he results observed in morphological characterization. The
inheritance of resistance in AM55-1A and C-AC-15 in crosses with
susceptible cultivar ‘Véndrantais’ was studied under greenhouses
conditions. The segregations ratios for resistance/susceptibility observed in
the different populations (F1, F2, BC1 and BC2) indicated a monogenic and
dominant inheritance in AM55-1A and two independent genes with
epispastic interaction double recessive control resistance in C-AC-15. The
backcross population (BC1) derived from AM55-1A x ‘Véndrantais’ and F2
population from C-AC-15 x ‘Véndrantais’ were utilized to identify QTLs
associated to resistance to P. xanthii using bulked segregation analysis with
243 SNP molecular markers. Two QTLs (Pm-AM55-1A_1 and Pm-A551A_2) were identified on ligation group V from AM55-1A x ‘Véndrantais’.
One QTL (Pm-C-AC-15_5) on ligation group V and other (Pm-C-AC-15_9)
on ligation group IX.
Key words: Cucumis melo L. Genetic control. Powdery mildew. Molecular
markers. QTL.
LISTA DE TABELAS
Tabela 1.
Acessos de meloeiro avaliados para reação a Podosphaera.
xanthii. Valencia, UPV, 2014………………………….......... 44
Tabela 2.
Código, origem e variedade dos acessos usados como
padrões de referência, 2014..................................................... 50
Tabela 3.
Primers de microssatélite sintetizados para Cucumis melo.
Mossoró-RN, UFERSA, 2014.............................................
55
Tabela 4.
Média da severidade da doença na folha e reação de acessos
de meloeiro a P. xanthii raça 1. Valencia, UPV,
2014.......................................................................................... 57
Tabela 5.
Caracterização morfológica qualitativa de acessos/híbridos.
Mossoró-RN, UFERSA, 2014..............................................
59
Tabela 6.
Caracterização morfológica quantitativa de genótipos de
meloeiro. Mossoró-RN, UFERSA, 2014................................ 60
Tabela 7.
Medidas descritivas para o estudo da diversidade baseado
nos marcadores microssatélites polimórficos em acessos de
meloeiro. Mossoró-RN, UFERSA, 2014..............................
62
Tabela 8.
Reação de diferenciadoras de meloeiro a isolados coletados
em casa de vegetação em Valencia. Valencia, UPV,
2014…………………………………………………………. 89
Tabela 9.
Frequência absoluta e teste de Qui-quadrado avaliado em um
retrocruzamento derivado do cruzamento entre AM55-1A e
‘Véndrantais’. Valencia, UPV, 2014……………………...... 90
Tabela 10.
Frequência absoluta e teste de Qui-quadrado avaliado em um
retrocruzamento derivado do cruzamento entre AM55-1A e
‘Véndrantais’. Valencia, UPV, 2014...................................... 91
Tabela 11.
Marcadores SNP polimórficos entre os genitores AM55-1A
e ‘Véndrantais’, bulks resistentes e suscetíveis. Valencia,
UPV, 2014............................................................................... 109
Tabela 12.
Informações dos QTLs identificados na população de
retrocruzamento RC1 do cruzamento AM55-1A x
‘Véndrantais’. Valencia, UPV, 2014....................................... 110
Tabela 13.
Informações de grupo de ligação, posição, genotipado dos
genitores e geração filial F1 e o número de plantas
homozigotas do retrocruzamento RC1 (F1 x ‘Véndrantais’)
fenotipadas como resistentes e suscetíveis de quinze
marcadores SNPs. Valencia, UPV, 2014...............................
112
Tabela 14.
Informações dos marcadores SNP polimórficos entre os
genitores C-AC-15 e ‘Véndrantais’. Valencia, UPV,
2014.......................................................................................... 113
Tabela 15.
Informações dos QTLs identificados na população F2 do
cruzamento C-AC-15 x ‘Véndrantais’. Valencia, UPV, 2014. 114
LISTA DE FIGURAS
Figura 1.
Figura 2.
Figura 3.
Figura 4.
Figura 5.
Figura 6.
Figura 7.
Ciclos de vida assexual e sexual de Podosphaera
xanthii........................................................................................
22
Frutos dos acessos identificados como resistentes. MossoróRN, UFERSA, 2014.................................................................
58
Dendrograma de acessos de meloeiro obtido pelo método de
agrupamento hierárquico UPGMA a partir da matriz de
distância de Nei gerada com informações de 13 marcadores
microssatélites. Correlação cofenética (CC=0,87**). MossoróRN, UFERSA, 2014...........................................................
64
Dispersão gráfica bidimensional de acessos de meloeiro
obtida pela análise fatorial de correspondência estimada com
base em 13 marcadores microssatélites. Mossoró-RN,
UFERSA, 2014.......................................................................
65
Frutos dos genitores utilizados nos estudos da herança para
resistência a P. xanthii. Valencia, UPV, 2014.........................
87
Picos observados na análise de QTLs na população de
retrocruzamento RC1 do cruzamento AM55-1A x
‘Véndrantais’. Valencia, UPV, 2014........................................
110
Localização dos QTLs Pm-AM55-1A_1 e Pm-AM55-1A_2 no
grupo de ligação V. Valencia, UPV, 2014................................
111
Figura 8.
Picos observados na análise de QTLs na população de F2 do
cruzamento C-AC-15 x ‘Véndrantais’. Valencia, UPV, 2014. 114
Figura 9.
Localização dos QTLs Pm-C-AC-15_5 e Pm-C-AC-15_9 nos
grupos de ligação V e IX, respectivamente. Valencia, UPV,
2014.........................................................................................
115
SUMÁRIO
1 INTRODUÇÃO GERAL ...........................................................................................
2 REFERENCIAL TEÓRICO......................................................................................
2.1 Diversidade genética do Meloeiro..............................................................................
2.2 Oídio (Podosphaera xanthii)......................................................................................
2.3 Genética da resistência ..............................................................................................
2.4 Identificação de marcadores de DNA relacionados a genes de resistência a
Podosphaera xanthii em meloeiro.......................................................................
REFERÊNCIAS..............................................................................................................
15
18
18
20
23
24
27
CAPITULO 1
CARACTERIZAÇÃO MORFOLÓGICA E MOLECULAR DE ACESSOS DE
MELOEIRO RESISTENTES A Podosphaera xanthii.........................................
RESUMO........................................................................................................................
ABSTRACT....................................................................................................................
1 INTRODUÇÃO...........................................................................................................
2 MATERIAL E MÉTODOS.......................................................................................
2.1 Avaliação da reação de acessos a P. xanthii..............................................................
2.1.1 Local.......................................................................................................................
2.1.2 Germoplasma..........................................................................................................
2.1.3 Obtenção e manutenção do inóculo........................................................................
2.1.4 Inoculação e avaliação............................................................................................
2.1.5 Delineamento e Análises estatísticas......................................................................
2.2 Caracterização morfológica dos acessos ...................................................................
2.2.1 Local.......................................................................................................................
2.2.2 Germoplasma..........................................................................................................
2.2.3 Caracterização morfológica....................................................................................
2.2.4 Caracteres avaliados...............................................................................................
2.2.5 Análises estatísticas...............................................................................................
2.3 Caracterização molecular dos acessos ......................................................................
2.3.1 Local........................................................................................................................
2.3.2 Germoplasma...........................................................................................................
2.3.3 Extração de DNA.....................................................................................................
2.3.4 Reação PCR............................................................................................................
2.3.5 Análises estatísticas................................................................................................
3 RESULTADOS...........................................................................................................
3.1 Avaliação da reação de acessos a P. xanthii..............................................................
3.2 Caracterização morfológica dos acessos ...................................................................
3.3 Caracterização molecular...........................................................................................
4 DISCUSSÃO................................................................................................................
5 CONCLUSÕES...........................................................................................................
REFERÊNCIAS..............................................................................................................
38
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73
CAPITULO 2
HERANÇA DA RESISTÊNCIA A Podosphaera xanthii NOS ACESSOS DE 56
MELOEIRO AM55-1A E C-AC-15.............................................................................. 81
RESUMO........................................................................................................................
ABSTRACT..................................................................................................................
1 INTRODUÇÃO..........................................................................................................
2 MATERIAL E MÉTODOS......................................................................................
2.1 Local..........................................................................................................................
2.2 Germoplasma.............................................................................................................
2.3 Manutenção do isolado..............................................................................................
2.4 Avaliação da reação nas populações..........................................................................
2.5 Análises estatísticas...................................................................................................
3 RESULTADOS..........................................................................................................
3.1 Identificação de raça................................................................................................
3.2 Cruzamento AM55-1A x ‘Véndrantais’....................................................................
3.3 Cruzamento C-AC-15 x ‘Véndrantais’......................................................................
4 DISCUSSÃO...............................................................................................................
5 CONCLUSÕES...........................................................................................................
REFERÊNCIAS.............................................................................................................
82
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86
86
86
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87
88
89
89
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97
CAPITULO 3
IDENTIFICAÇÃO DE MARCADORES SNP ASSOCIADOS À RESISTÊNCIA
A Podosphaera xanthii EM MELOEIRO....................................................................
101
RESUMO........................................................................................................................
ABSTRACT..................................................................................................................
1 INTRODUÇÃO..........................................................................................................
2 MATERIAL E MÉTODOS......................................................................................
2.1 Local..........................................................................................................................
2.2 Germoplasma............................................................................................................
2.3 Obtenção, manutenção do isolado e avaliação da reação nas populações...............
2.4 Extração de DNA......................................................................................................
2.5 Marcadores SNP e Análises de QTLs.....................................................................
2.7 Análises estatísticas...................................................................................................
3 RESULTADOS...........................................................................................................
3.1 Cruzamento AM55-1A x ‘Véndrantais’....................................................................
3.2 Cruzamento C-AC-15 x ‘Véndrantais’.....................................................................
4 DISCUSSÃO...............................................................................................................
5 CONCLUSÕES..........................................................................................................
REFERÊNCIAS............................................................................................................
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1 INTRODUÇÃO GERAL
O Nordeste brasileiro responde por mais de 95% da produção e exportação
de melão (Cucumis melo L., 2n=2x=24). Os principais Estados produtores no
período de agosto de 2013 a janeiro de 2014 foram o Ceará e o Rio Grande do
Norte, com respectivamente 61,14% e 38,76% da produção exportação nacional
(MDIC/ALICE WEB, 2014). Os frutos produzidos têm como destino a
Comunidade Europeia, Estados Unidos, Ásia e Chile (NUNES et al., 2011). Os
polos produtores são Vale do Jaguaribe, no Ceará, e o Agropolo Mossoró-Assu, no
Rio grande do Norte. As razões do destaque dos referidos Estados são as condições
climáticas favoráveis ao desenvolvimento da cultura como altas temperaturas
(>28ºC), baixa precipitação pluviométrica (≈ 600 mm ano-1), a alta luminosidade e
a adoção de tecnologia de precisão pelas empresas produtoras. Não obstante o
sucesso da cultura do meloeiro no Nordeste, muitos problemas de natureza
fitopatológica reduzem a produção e qualidade dos frutos.
Dentre esses problemas, o oídio pode ser citado como a principal doença
fúngica da parte aérea na estação “seca” de junho a janeiro. A referida doença é
ocasionada pela espécie Podosphaera xanthii (Castagne) U. Braun & N. Shishkoff
(SHISHKOFF, 2000), anteriormente conhecida por Sphareotheca fuliginea
(Schlecht ex Fr.) Pollaci (S. fusca/Fr./Blumer, emenda Braun) (BRAUN, 1995). O
fungo infecta principalmente a área foliar da cultura, reduzindo a taxa
fotossintética da planta e por consequência diminuindo a produção e qualidade dos
frutos (SALES JÚNIOR et al., 2011).
O controle do oídio do meloeiro é realizado pela aplicação de fungicidas a
base de enxofre (McGRANTH, 2001). No Brasil, os fungicidas utilizados para o
controle de oídio representam uma parcela considerável dos custos de produção.
Todavia, nem sempre a doença é totalmente controlada, como nos casos em que o
fungo tem sua sensibilidade aos produtos químicos reduzida (HOLLOMON;
WHEELER, 2002). Por essa razão, o uso de cultivares resistente tem sido um dos
principais métodos utilizados com sucesso no controle a P. xanthii (HOSOYA et
15
al., 2000). As principais vantagens do método são: a fácil adoção por parte do
produtor, a associação com outros métodos de controle e a não agressão ao meio
ambiente.
Uma primeira ação é a identificação de fontes de resistência no
germoplasma disponível. Por ser uma espécie extremamente polimórfica para
muitos caracteres, muitas fontes de resistência a P. xanthii, principalmente aquelas
de origem indiana, foram identificadas em meloeiro. Todavia, em razão da
variabilidade na população do patógeno, a resistência sempre é superada, sendo
necessária uma busca incessante de novas fontes de resistência no germoplasma
disponível, em todo o mundo (DHILLON et al., 2012).
Uma vez identificadas fontes de resistência, é preciso entender o controle
genético da resistência nessas fontes. Isso porque a herança depende da fonte de
resistência bem como do background genético do genitor suscetível utilizado no
estudo. Em razão disso, existem diferentes modos de herança relatados na
literatura, todavia, a maioria dos estudos apontem para modelos mais simples para
explicar o controle genético da resistência de meloeiro a P. xanthii (JAHN et al.,
2002). O conhecimento da herança é importante porque norteia o melhorista no
processo de transferência do(s) alelo(s) para genótipos comerciais.
Outro aspecto relevante nos programas de melhoramento visando
resistência a P. xanthii é a eficiência do processo de seleção. Em razão de fatores
como métodos de inoculação, avaliação, idade da planta e condições ambientais, a
fenotipagem é limitada e pouco eficiente em muitos casos (COHEN et al., 2004),
sendo, portanto, necessária a busca de ferramentas que substitua ou tornem a
fenotipagem mais confiável. Para isso, a ferramenta mais utilizada é o emprego dos
marcadores moleculares de DNA para identificar QTLs relacionados a caracteres
de interesse. O termo QTL (Quantitative Trait Locis) corresponde às regiões do
genoma responsáveis pela expressão de caracteres que possuam distribuição
contínua. Mapear um QTL significa identificar a sua posição no genoma e estimar
seus efeitos genéticos aditivos, de dominância e epistaticos dependendo do modelo
adotado (COLLARD et al., 2005). Para realizar o mapeamento são utilizadas
diferentes populações como F2, retrocruzamentos, linhas recombinantes com o
16
intuito é obter marcadores estritamente ligados aos genes de resistência. Nesse
sentido, para o patossistema C. melo e P. xanthii, foram realizados alguns trabalhos
que identificaram QTLs em meloeiro (PITRAT, 1991; PERIN et al., 2002;
PERCHEPIED et al., 2005; FUKINO et al., 2008; YUSTE-LISBONA et al.,
2011a; WANG et al., 2011; NING et al., 2013). Porém apenas um deles foi capaz
de identificar um marcador estritamente ligado (< 1,0 cM) (ZHANG et al., 2012).
O presente trabalho foi realizado para atender os seguintes objetivos:
a) Identificar e caracterizar morfológica e molecularmente fontes de
resistência a P. xanthii;
b) Estudar o controle genético da resistência dos acessos AM55-1A e CAC-15 a P. xanthii;
c) Identificar marcadores moleculares do tipo SNP associados a genes de
resistência a P. xanthii dos acessos AM55-1A e C-AC-15.
17
2 REFERENCIAL TEÓRICO
2.1 DIVERSIDADE GENÉTICA DO MELOEIRO
O meloeiro, Cucumis melo L., pertence ao gênero Cucumis da família
Cucurbitaceae. A sua região de origem vem sendo motivo de debates entre
estudiosos. Um grupo defende o leste africano como provável centro de origem do
meloeiro. A principal linha de argumentação se fundamenta no número de
cromossomos (2n=2x=24) uma vez que as demais espécies de cucurbitáceas deste
gênero têm o mesmo número básico de cromossomos (x = 12) (KERJE; GRUM
2000; LUAN et al. 2008). Entretanto, a maior diversidade de landraces cultivadas
é encontrada na Ásia (AKASHI et al. 2002; DWIVEDI et al. 2010). Em adição,
tem sido observado insucesso nos cruzamentos envolvendo o meloeiro e outras
espécies do gênero Cucumis da África (SEBASTIAN et al., 2010). Informações de
sequencias de DNA mitocondrial e nuclear de acessos africanos, asiáticos e
australianos apontam a Ásia, mais especificamente, a Índia, como local de origem
do meloeiro a partir da espécie Cucumis callosus (Rottle) Cogn. et Harms e que de
forma surpreendente, muitas espécies silvestres australianas são estreitamente
relacionadas com o meloeiro (SEBASTIAN et al., 2010). Estudos recentes sobre o
meloeiro se originou de Cucumis callosus (JOHN et al., 2012).
A espécie foi domesticada primeiramente devido à composição nutricional
de suas sementes com posterior seleção de frutos. Durante a sua domesticação, o
meloeiro sofreu um intenso processo de diversificação, produzindo centros de
diversidade dessa cucurbitácea. Os principais centros de diversidade estão
localizados na bacia do Mar Mediterrâneo (desde o Sudeste europeu até a Turquia),
na Ásia Central (Irã, Iraque e Uzbequistão), na Índia e na Ásia oriental em países
como China, Japão e Coréia (WHITAKER; DAVIS, 1962).
O meloeiro possuiu uma grande diversidade morfológica em toda a planta,
em especial em seus frutos, sendo considerada a espécie mais polimórfica do
gênero Cucumis (LUAN et al., 2010). Charles Naudin (1859) foi o primeiro a
subdividir a grande variação observada. O botânico francês trabalhou com uma
18
coleção de 2.000 acessos e dividiu a espécie C. melo em 16 variedades botânicas.
O trabalho pioneiro de Naudin em 1859 foi a base para classificações subsequentes
(COGNIAUX; HARMS, 1924; FILOV, 1960; WHITAKER; DAVIS, 1962;
MUNGER; ROBINSON, 1991; PITRAT et al., 2000).
A espécie Cucumis melo L. foi subdividida em duas subespécies em função
da presença e comprimento de pelos no ovário. Segundo esse critério, cultivares
com ovários de pelos longos pertencem à subespécie agrestes; enquanto que
ovários com pelos curtos identificam a subespécie melo (JEFREY, 1980). As
variedades ou grupo botânicos acidulus, conomon, momordica, makuwa, chinensis
pertencem à subespécie agrestis; enquanto chate, flexuosus, tibish, adana, ameri,
cantalupensis, chandalak, reticulatus, inodorus e dudaim à subespécie melo
(PITRAT, 2008; BURGER et al.; 2010). Ressalta-se ainda que algumas destas
variedades não são bem definidas pois muitas características são heterogêneas,
além disso, existem tipos intermediários, dificultando, em muitas situações, a
classificação. Todavia, estudos atualizados com marcadores moleculares como
microssatélites e SNPs têm confirmado a classificação proposta por Pitrat (2008)
(ESTERAS et al., 2013).
Dentro das variedades ou grupos botânicos estão os tipos de melão, sendo
os tipos comercializados no Brasil: Amarelo, Honey Dew, Pele de sapo,
Cantaloupe, Gália e Charentais. Os três primeiros tipos de melão pertencem à
variedade botânica inodorus e se caracterizam por terem frutos sem aroma, boa
resistência ao transporte e elevada vida pós-colheita. Os frutos dos melões do tipo
Cantaloupe (americano) e Charentais (europreu) são aromáticos, têm elevados
valores de sólidos solúveis e baixa conservação pós-colheita (NUNES et al., 2005).
O melão Galia é de origem israelense (KARCHI, 2000). Esses tipos de melão
podem ser cruzados entre si, existindo continuidade entre eles, com muitas formas
intermediárias. Com efeito, as diferentes características fenotípicas dos tipos de
melão podem ser combinadas e exploradas nos programas de melhoramento dessa
cultura, propiciando a produção de genótipos superiores (PITRAT et al., 2000).
19
2.2 OÍDIO (Podosphaera xanthii)
O oídio é uma enfermidade de grande importância econômica que afeta
mundialmente as cucurbitáceas, em especial o melão. A referida doença é
ocasionada pelas espécies fúngicas Podosphaera xanthii (Castagne) U. Braun & N.
Shishkoff (SHISHKOFF, 2000), anteriormente conhecida por Sphareotheca
fuliginea (Schlecht ex Fr.) Pollaci (S. fusca/Fr./Blumer, emenda Braun) (BRAUN,
1995); e Golovinomyces cichoracearum (D.C.) V.P. Heluta (BRAUN, 1999),
anteriormente denominada Erysiphe cichoracearum D.C. ex merat. As espécies
têm diferentes distribuições geográficas. A espécie P. xanthii é cosmopolita
(NARUZAWA et al., 2011), enquanto G. cichoracearum parece ser prevalente no
continente europeu (KŘÍSTKOVÁ et al., 2009).
A possível explicação para a distinção nas distribuições geográficas pode
ser devida ao comportamento termófilo de P. xanthii que possui faixa de
temperatura ótima para germinação conidial entre 25-30ºC contra uma faixa de 1525ºC de G. cichoracearum (BERTRAND et al., 2002). É consenso entre os autores
que P. xanthii é a principal espécie causadora de oídio em todo o mundo
(HOSOYA et al., 2000; DEL PINO et al., 2002; COHEN et al., 2004;
McCREIGHT, 2006; MIAZZI et al., 2011; ZHANG et al., 2012). No Brasil, as
duas espécies foram detectadas em condições de casa de vegetação no Estado do
Paraná, ocasionando oídio em diversas cucurbitáceas de importância econômica
(AGUIAR et al., 2012). Na região Nordeste, apenas a espécie P. xanthii foi
detectada em condições de campo (SALES JÚNIOR et al., 2011).
A doença ocorre principalmente nos períodos de baixa umidade relativa do
ar e elevadas temperaturas. O oídio aparece em folhas, pecíolos e gemas jovens de
cucurbitáceas, como um pó branco pulverulento composto por micélio denso e
esporos. Em condições favoráveis ao desenvolvimento do fungo toda a superfície
da folha pode ser coberta pelas suas estruturas. O fungo pode chegar a cobrir
ambas as faces da folha e provocar desfolhação prematura nas plantas
(SITTERLY, 1978). A redução da produtividade se deve basicamente à diminuição
da área foliar para fotossíntese.
20
O oídio reduz o rendimento da cultura pela diminuição do tamanho e
número de frutos (VIANA et al., 2001) como da sua qualidade do fruto (SALES
JUNIOR et al., 2011). Perdas de produção próximas a 50% foram registradas em
lavouras de meloeiro em Cuba (DELGADO; LEMUS, 2004).
O fungo tem ciclos de vida assexual, mais comum, e sexual, que é
raramente observado em campos de cucurbitáceas em todo o mundo. O ciclo de
vida assexual de P. xanthii inicia-se com deposição do conídio em um hospedeiro
suscetível (Figura 1). O conídio produz um tubo germinativo curto que se
diferencia em um apressório a partir do qual um haustório primário forma-se na
célula epidérmica. Do apressório primário surge uma hifa primária que forma
apressórios secundários a partir dos quais se formam haustórios secundários. A
partir da hifa primária formam-se hifas secundárias. Conidióforos emergem
verticalmente de algumas hifas secundárias. No topo de cada conidióforo, cinco a
dez conídios de forma oval são produzidos em cadeias. Hifas secundárias e
conídios formam o micélio branco na superfície da planta, sintoma característico
do oídio. Por ser um fungo heterotálico, a reprodução sexual ocorre somente após o
encontro de hifas distintas quanto ao tipo de acasalamento (Figura 1). Como
consequência, é produzido um tipo de corpo de frutificação denominado de
chasmothecia. Os chasmothecium contém um asco com oito ascósporos
geneticamente diferentes (PÉREZ-GARCIA et al., 2009).
21
Figura 1. Ciclos de vida assexual e sexual de P. xanthii (Adaptado de PEREZGARCIA et al., 2009).
Existe variabilidade genética nas populações das espécies P. xanthii e G.
cichoracearum em todo o mundo (HOSOYA et al., 1999; HOSOYA et al., 2000).
A variabilidade constatada em P. xanthii é maior em relação àquela observada em
G. cichoracearum uma vez que foram registradas 45 raças de P. xanthii e 13 raças
de G. cichoracearum (McCREIGHT et al., 2012). Isso sem levar em consideração
a variação patotípica dentro das raças da espécie P. xanthii. Em levantamento
preliminar de raças de P. xanthii no Brasil, Reis e Buso (2004) observaram que de
31 isolados, 21 eram da raça 1 e oito da raça 2, evidenciando a prevalência da raça
1. Com uma amostra de 65 isolados, a maioria provenientes do Nordeste, Fazza
(2006) identificou as raças 0, 1, 2 (FR), 3, 4 e 5, com prevalência das raças 1 e 2.
Sales Júnior et al. (2011) também observaram prevalência das raças 1 e 2 no
Agropolo Mossoró-Assu. A presença de raças é um grande problema para o
melhoramento genético. A variação na população do patógeno diminui a vida útil
das cultivares resistentes (HOSOYA et al., 2000). Por esta razão, é importante
22
sempre acompanhar as raças prevalentes em uma determinada região para orientar
os programas de melhoramento (BURGER et al., 2010).
O controle químico é realizado por aplicações de fungicidas a base de
enxofre (McGRANTH, 2001). No entanto, além de ser oneroso e perigoso para o
ambiente, tem sido pouco eficiente (HOLLOMON; WHEELER, 2002). Por outro
lado, a importância de métodos alternativos de controle tem aumentado
significativamente frente às pressões por produtos com menores quantidades de
resíduos e redução da contaminação ambiental.
2.3 GENÉTICA DA RESISTÊNCIA
Uma das alternativas é o uso de cultivares com resistência genética. O uso
de resistência genética tem como principais vantagens a acessibilidade pelo
produtor, não contaminação ou poluição ao meio ambiente e compatibilidade com
outros métodos de controle. O melhoramento genético para resistência a P. xanthii
tem sido realizado com sucesso em várias partes do mundo, contudo a grande
variabilidade genética da população do patógeno dificulta o trabalho de obtenção
de cultivares resistente (HOSOYA et al., 1999).
Os trabalhos com resistência genética a P. xanthii iniciaram-se pela coleta
de acessos de melão em diversas partes do mundo (JAGGER et al., 1938). Em um
acesso proveniente da Índia (PI 78374) observou-se resistência ao oídio raça 1. Em
seguida, por meio de um programa de retrocruzamentos combinado com seleção de
campo, observou-se que a raça 1 era controlada por um gene simples contido na
cultivar ‘PMR 45’. Todavia, no ano seguinte, ‘PMR 45’ e suas seleções foram
suscetíveis ao oídio, evidenciando uma nova raça. Genes de resistência a essa nova
raça, denominada de raça 2, foram obtidos em PI 78374. Utilizando a cultivar
‘PMR 45’ como genitor, novas cultivares resistentes a raça 2 foram desenvolvidas,
como por exemplo: ‘PMR 5’, ‘PMR 6’ e PMR 7’. Bohn; Whitaker (1964)
verificaram que a resistência à raça 2 era controlada por um gene parcialmente
dominante, Pm2. Harwood; Markarian (1968), usando a variedade ‘Seminole’,
oriundo de PI 124112, demonstraram que a resistência era controlada por dois
23
pares de genes os quais tinham efeitos parcialmente aditivos. Os genes maiores
mostraram dominância parcial, enquanto genes menores dominância completa.
Essa resistência era diferente daquela para Pm2, e foi altamente eficaz no leste dos
EUA, mas menos no Oeste.
A história aponta alguns os acessos da variedade botânica momordica
como as principais fontes de resistência às diversas raças de P. xanthii e G.
cichoracearum (DHILLON et al., 2012). Estudos mais recentes identificaram
novas fontes de resistência, como ‘PMAR Nº 5’ resistente a raça 1 (FUKINO et al.,
2004), 'TGR-1551' (YUSTE-LISBONA et al., 2010) resistente as raças 1, 2 e 5, ‘PI
313970’ resistente a raça ‘S’ (SEDLAROVÁ et al., 2009). Os principais híbridos
cultivados no Agropolo Mossoró-Assu têm resistência à raça 1 e 2 em razão da
prevalencia dessas raças nesta regiao de cultivo (FAZZA, 2006; SALES JÚNIOR
et al., 2011).
Para o aproveitamento das fontes de resistência e transferência de alelos de
interesse é importante o conhecimento da herança envolvida na resistência. Nesse
sentido, muitos trabalhos foram realizados a medida que novas fontes eram
identificadas (JAGGER et al., 1938; HARWOOD; MARKARIAN, 1968; EPINAT
et al., 1993; FLORIS; ALVAREZ, 1995; FUKINO et al., 2004; PITRAT;
BESOMBLES, 2008; YUSTI-LISBONA et al., 2010; McCREIGHT; COFFEY,
2011). Os resultados relatados foram muito divergentes entre os manuscritos
devido a diversos fatores como genitores, raças, métodos de avaliação e condições
ambientais.
2.4 IDENTIFICAÇÃO DE MARCADORES DE DNA RELACIONADOS A
GENES DE REISTÊNCIA A Podosphaera xanthii EM MELOEIRO
Os primeiros marcadores moleculares, também chamados de marcadores
bioquímicos, foram as isoenzimas. Esses marcadores eram populares no início dos
anos 70, devido aos avanços em géis de amido e de coloração histoquímica de
proteínas. Avanços na biologia molecular permitiram o desenvolvimento de
marcadores de polimorfismos baseados em sequências de DNA. Os marcadores
24
RFLP (polimorfismo de restrição de comprimento de fragmento) baseiam-se nas
variações do tamanho dos fragmentos de DNA. Estes marcadores são
codominantes e foram amplamente utilizados nos anos 80 e 90. Com o
estabelecimento da técnica de PCR, novos marcadores como RAPD (polimorfismo
de DNA amplificado ao acaso), AFLP (polimorfismo de comprimento de
fragmentos amplificados), SCAR (regiões amplificadas caracterizadas por
sequências), SSR (seqüências simples repetidas) e SNPs (polimorfismo de
nucleotídeo simples) foram desenvolvidos (BECERRA; PAREDES, 2000).
Os marcadores SNPs são mais recentes e se baseiam na detecção de
polimorfismo resultante da alteração de uma única base do genoma. Para que a
variação seja considerada SNP, ela precisa ocorrer em pelo menos 1% da
população. A presença de SNPs em meloeiro foi relatada inicialmente pelos
trabalhos realizados por pesquisadores espanhóis. Foram identificados 768
marcadores do tipo SNPs desenvolvidos na plataforma ‘Gold Gate’ (MORALES et
al., 2004; DELEU et al., 2009; BLANCA et al., 2012). Esses SNPs identificados in
silico foram posteriormente validados utilizando-se indivíduos representantes de
diferentes variedades botânicas (ESTERAS et al., 2013).
O termo QTL (em inglês Quantiative Trait Loci) corresponde à uma região
do genoma relacionada a um caracter de herança quantitativa. O mapeamento de
QTLs consiste em se detectar uma associação entre o fenótipo em questão e o
genótipo de marcadores (TANKSLEY, 1993). Além disso, estima-se seus efeitos
genéticos aditivos, de dominância e epsitaticos dependendo do modelo adotado
(COLLARD et al., 2005). Existem alguns trabalhos que relatam a identificação de
QTLs ligados a genes de resistência à determinadas raças de P. xanthii. Vários
QTLs foram identificados no grupo de ligação V: Pm-W da linhagem WMR-29
(PITRAT, 1991); Pm-NA (WANG et al., 2011), Pmv.1 da diferenciadora PI
124112 (PERCHEPIED et al. 2005) e Pm-R do acesso TGR-1551 (YUSTELISBONA et al., 2011a). Os QTLs Pm-y do acesso VA 435 (PITRAT, 1991;
PERIN et al. 2002), PmXII.1 (PERCHEPIED et al. 2005) e um QTL relatado por
Fukino et al. (2008) estão associados ao grupo de ligação XI. O QTL Pm-x
(PITRAT, 1991; PERIN et al. 2002) e um segundo QTL (FUKINO et al.
25
2008) estão associados com o grupo de ligação II. No Brasil, foi identificado o
QTL Pm-1 da linhagem AF-125 associado ao LG IX (TEIXEIRA et al. 2008).
Estudando o cruzamento entre PI 414723 x ‘Véndrantais’, Fazza et al. (2013)
observou a presença de QTLs no grupo de ligação II, denominados de Pm-x1.5 e
Pm-x3. O primeiro associado à resistência às raças 1 e 5, e o segundo, à raça 3.
Também foi detectado um marcador AFLP (H35M75_156) situado a 1,3 cM de
Pm-x1.5 e 3,8 cM de Pm-x3.
Não há informações sobre o mapeamento de QTLs como fontes de
resistências identificadas entre os acessos oriundos de pequenos produtores
brasileiros, sendo, portanto, importante, tais informações para auxiliar a seleção e
desenvolvimento de cultivares resistentes às raças prevalentes no semiárido
brasileiro.
26
REFERÊNCIAS
AGUIAR, B.M.; VIDA, J.B.; TESSMANN, D.J.; OLIVEIRA, R.R.; AGUIAR,
R.L.; ALVES, T.C.A. Fungal species that cause powdery mildew in greenhousegrown cucumber and melon in Paraná State, Brazil. Acta Scientiarum, v. 34, n. 3,
p. 247-252, 2012.
AKASHI, Y.; FUKUDA, N.; WAKO, T.; MASUDA, M.; KATO, K. Genetic
variation and phylogenetic relationships in East and South Asian melons, Cucumis
melo L., based on the analysis of five isozymes. Euphytica, v. 125, n.2, p. 385396, 2002.
ALICEWEB/MDIC - Sistema de Análise das Informações de Comércio
Exterior/Ministério do Desenvolvimento, Indústria e Comércio Exterior. 2014,
16 de Fevereiro. Disponível em http://aliceweb.mdic.gov.br//index/home.
BECERRA, V.V.; PAREDES, C.M. Use of biochemical and molecular markers in
genetic diversity. Studies Agriculture Technic, v. 60, p. 271-281, 2000.
BERTRAND, F. AR Hale's Best Jumbo: a new differential melon variety
(Spharotheca fuliginea) races in leaf disk test. p. 234-237. In: D.N.Maynard (ed.).
Cucurbitaccae 2002. ASHS Press. Alexandria, Va. 2002.
BLANCA, J.; ESTERAS, C.; ZIARSOLO, P.; FERNANDEZ, V.; COLLADO, C.;
RODRIGUEZ, R.; BALLASTER, A.; ROIG, C.; CAÑIZARES, J.; PICÓ, B.
Transcriptome sequencing for SNP Discovery across Cucumis melo. BMC
Genomics, v. 13, p. 230-245, 2012.
BOHN, G.W.; WHITAKER T.W. Genetics of resistance to powdery mildew rac 2
in muskmelon. Phytopathology, v. 54, n.4, p. 587-591, 1964.
27
BRAUN, U. The Powdery Mildews (Erysiphales) of Europe. Gustav Fischer
Verlag, Jena. 1995.
BRAUN, U. Some critical notes on the classification and the genetic
concept of the Erysiphacea. Schlechtendalia, v. 3, p. 48-54, 1999.
BURGER, Y.; PARIS, H.S.; COHEN, R.; KATZIR, N.; TADMOR, Y.; E.
LEWINSOHN, E.; SCHAFFER, A.A. Genetic diversity of Cucumis melo.
Horticulture Review. v. 36, p. 165–198, 2010.
COGNIAUX, A.; HARMS, H. Cucurbitaceae - Cucurbiteae - Cucumerineae, p.
116-157. In Das Pflanzenreich. Regni vegetabilis conspectus (A. Engler ed.).
Vol: 88 (IV.275.II). Ilhelm Engelmann, Leipzig (DE). 1924.
COLLARD, B.C.Y.; JAHUFER, M.Z.Z.; BROUWER, J.B.; PANG, E.C.K. An
introduction to markers, quantitative trait loci (QTL) mapping and marker-assisted
selection for crop improvement: The basic concepts. Euphytica, v. 142, p. 169196, 2005.
COHEN, R. BURGER, Y.; KATZIR, N. Monitoring physiological races of
Podosphaera xanthii (syn. Sphaerotheca fuliginea), the causal agent of powdery
mildew in cucurbits: factors affecting race identification and the importance for
research and commerce. Phytoparasita. v. 32, p. 174-183, 2004.
DELEU, W.; ESTERAS, C.; ROIG, C. ;FERNANDEZ-SILVA, M.; GONZALEZIBEAS, D.; BLANCA, J, ARANDA, MA, ARU´S P, NUEZ F, MONFORTE AJ,
PICO MB, GARCIA-MAS J. A set of EST-SNPs for map saturation and cultivar
identification in melon. BMC Plant Biology, v. 9, n.1, 75-90. 2009.
DELGADO, G.; LEMUS, Y. Taxonomía de Sphaerotheca fuliginea (Erysiphales,
Ascomycota) sobre melón en Cuba. Fitosanidad, v. 8, n. 2, p. 27-29, 2004.
28
DEL PINO, D.; OLALLA, L.; PEREZ-GARCIA, A.; RIVERA, M.E.; GARCIA,
S.; MORENO, R.; VICENTE, A.; TORÉS, J.A. Occurrence of Races and
Pathotypes of Cucurbit Powdery Mildew in Southeastern Spain. Phytoparasitica,
v. 30, n.5, p. 1-8, 2002.
DHILLON, N.P.S., MONFORTE, A.J., PITRAT, M. Melon landraces of India:
contributions and importance. Plant Breeding Reviews, v. 35, p. 85-150, 2012.
DWIVEDI, N.K.; DHARIWAL, O.P.; KRISHNAN, S.G.; BHANDARI, D.C.
Distribution and extent of diversity in Cucumis species in the Aravalli ranges of
India. Genetic Resources Crop Evolution, v. 57, n.3, p 443-452, 2010.
EPINAT, C.; PITRAT, M.; BERTRAND, F. Genetic analysis of resistance of five
melon lines to powdery mildews. Euphytica, v. 65, p. 135-144, 1993.
ESTERAS, C.; FORMISANO, G.; ROIG, C.; DÍAZ, A.; BLANCA, J.; GARCIAMAS, J.; GÓMEZ-GUILLAMÓN, M.L.; LOPÉZ-SESÉ, A.I.; LÁZARO, A.;
MONFORTE, A.J.; PICÓ, B. SNP genotyping in melons: genetic variation,
population structure, and linkage disequilibrium. Theoretical and Applied
Genetics, v. 126, n. 5, p. 1285-1303, 2013.
FAZZA, A. C. Caracterização e ocorrência de agentes causais de oídio em
cucurbitáceas no Brasil e reação de germoplasma de meloeiro. Piracicaba:
ESALQ, 2006. 60p. (Dissertação de Mestrado). 2006.
FAZZA, A.C.; DALLAGNOL, L.J.; FAZZA, A.C.; MONTEIRO, C.C.;
LIMA, B.M.; WASSANO, D.T.; CAMARGO, L.E.A. Mapping of
resistance genes to races 1, 3 and 5 of Podosphaera xanthii in melon PI
414723. Crop Breeding and Applied Biotechnology, v. 13, n. 4, p. 349355, 2013.
29
FILOV,
A.I.
[The
problem
of
melon
systematics].
Vestnik
sel’skochozjajstvennoj nauki, v.1, p. 126-132. 1960.
FLORIS, E.; ALVAREZ, J.M. Genetic analysis of resistance of three melon lines
to Sphaerotheca fuliginea. Euphytica, v. 81, p. 181-186, 1995.
FUKINO, N.; KUNIHISA, M.; MATSUMOTO, S. Characterization of
recombinant inbred lines derived from crosses in melon (Cucumis melo L.), PMAR
5 x ‘Harukei No. 3’. Breeding Science, v. 54, p. 141-145, 2004.
FUKINO, N.; OHARA, T.; MONFORTE, A.J.; SUGIYAMA, M.; SAKATA, Y.;
KUNIHISA, M.; MATSUMOTO, S. Identification of QTLs for resistance to
powdery mildew and SSR markers diagnostic for powdery mildew resistance
genes in melon (Cucumis melo L.). Theoretical Applied Genetic, v. 118, n. 1, p.
165–175, 2008.
HARWOOD, R.R.; MARKARIAN, D. The inheritance of resistance to powdery
mildew in the cantaloupe variety Seminole. The Journal of Heredity, v. 59, n.2,
p. 126-130, 1968.
HOLLOMON, D.W.; WEELER, I.E. Controlling powdery mildews with
chemistry. In: The powdery mildews: a comprehensive treatise.
(BÉLANGER, R.R.; BUSHNELL, W.R.; DIK, A.J.; CARVER, T.L.W. Ed.). Ed.
APS Press, St. Paul (MN, USA). 2002. pp 249-255. Saint Paul, MN: APS
Press. 2002.
30
HOSOYA, K.; KUZUYA, M.; MURAKAMI, T.; KATO, K.; NARISAWA, K.;
EZURA, H. Impact of resistant melon cultivars on Sphaerotheca fuliginea. Plant
Breeding, v. 119, p. 286-288, 2000.
HOSOYA, K.; NARISAWA, K.; PITRAT, M.; EZURA, H. Race identification in
powdery mildew (Sphaerotheca fuliginea) on melon (Cucumis melo) in Japan.
Plant Breeding, v. 118, p. 259-262, 1999.
JAGGER, I.C.; WHITAKER, T.W.; PORTER, C.R. A new biologic form of
powdery mildew on muskmelons in the Imperial Valley of California. Plant
Disease Reporter, v. 22, n.2, p. 275-276, 1938.
JAHN, M.; MUNGER, H.M.; McCREIGHT, J.D. Breeding Cucurbit Crops for
Powdery Mildew Resistance. In:
The powdery mildews: a comprehensive
treatise. (BÉLANGER, R.R.; BUSHNELL, W.R.; DIK, A.J.; CARVER, T.L.W.,
eds), Ed. APS Press, St. Paul (MN, USA). 2002. pp 239-248.
JEFREY, C. A review of the cucurbitaceae. Botanic Journal Linneus Society, v.
81, n.2., p. 233-247, 1980.
JOHN,
K.J.;
SCARIAH,
S.;
NISSAR,
V.A.M.;
LATHA,
M.;
GOPALAKRISHNAN, S.; YADAV, S.R.; BHAT, K.V. On the occurrence,
distribution, taxonomy and genepool relationship of Cucumis callosus (Rottler)
Cogn, the wild progenitor of Cucumis melo L. from India. Genetic Resources
Crop Evolution, v. 59, n.1., p 1-10, 2012.
KARCHI, Z. Development of melon culture and breeding in Israel.
Proceedings of 7th EUCARPIA Meeting on Cucurbit Genetics and Breeding. Acta
Horticulture, v.510, p. 13-17, 2000.
31
KERJE, T., GRUM, M. The origin of melon, Cucumis melo: A review of the
literature. Acta Horticulture, v. 510, n.1, p. 34–37, 2000.
KRISTKOVÁ, E.; LEBEDA, A.; SEDLTLKOVÁ, B. Species spectra, distribution
and host range of cucurbit powdery mildews in the Czech Republic, and in some
other European and Middle Eastern countries. Phytoparasita, v. 37, p. 337-350.
2009.
LUAN, F., DELANNAY, I., STAUB, J.E. Chinese melon (Cucumis melo L.)
diversity analyses provide strategies for germplasm curation, genetic improvement,
and evidentiary support of domestication patterns. Euphytica, v. 164, n.2, p. 445461, 2008.
LUAN, F.; SHENG, Y.; WANG, Y.; STAUB, J.E. Performance of melon hybrids
derived from parents of diverse geographic Origins. Euphytica, v. 173, n.1, p. 116, 2010.
McCREIGHT, J.D. Melon-powdery mildew interactions reveal variation in melon
cultigens and Podosphaera xanthii races 1 and 2. Journal American Society
Horticulture Science, v.131, p. 59-65, 2006.
McCREIGHT, J.D.; COFFEY, M.D. Inheritance of Resistance in melon PI 313970
to Cucurbit powdery mildew incited by Podosphaera xanthii race S. Hortiscience,
v. 46, n. 6, p. 828-840, 2011.
McCREIGHT, J.D.; COFFEY, M.; SEDLAKOVA, B.; LEBEDA, A. Cucurbit
powdery of melon incited by Podosphaera xanthii: Global and western U.S.
perspectives. Cucurbitaceae 2012, Proceedings of the Xth EUCARPIA meeting
on genetics and breeding of Cucurbitaceae (eds. Sari, Solmaz and Aras) Antalya
(Turkey), October 15-18th, 2012.
32
McGRANTH, M.T. Fungicide resistance in cucurbit powdery mildew: Experiences
and challenges. Plant Disease, v. 85, n. 1, p. 236-245, 2001.
MIAZZI, M.; CATALDO LAGUARDIA, C.; FARETRA, F. Variation in
Podosphaera xanthii on Cucurbits in Southern Italy. Journal Phytopathology, v.
159, p. 538–545, 2011.
MORALES, M, ROIG, E, MONFORTE, A. J, ARÚS, P, GARCIA-MAS, J. Single
nucleotide polymorphisms detected in expressed sequence tags of melon (Cucumis
melo L.). Genome, v. 47, p. 352–360, 2004.
MUNGER, H.M.; ROBINSON, R.W. Nomenclature of Cucumis melo L.
Cucurbit Genetic Cooperative Report, Raleigh, v. 14, n. 1, p. 43-44, 1991.
NARUZAWA, E. S.; VALE, R. K. D.; SILVA, C. M.; CAMARGO, L. E. A.
Estudo da diversidade genética de Podosphaera xanthii através de marcadores
AFLP e sequências ITS. Summa Phytopathology, v. 37, n. 2, p. 1-8, 2011.
NAUDIN, C. Essais d’une monographie des espece`s et des varie´te´s du genre
Cucumis. Annual Science Natural Botonic, v. 4, p. 5-87, 1859.
NUNES, G.H.S.; SANTOS JÚNIOR, J.J.; ANDRADE, F.V.; BEZERRA NETO,
F.; MENEZES, J.B.; PEREIRA, E.W.L. Desempenho de híbridos do grupo
inodorus em Mossoró. Horticultura Brasileira, v. 23, n. 1, p. 90-94, 2005.
NUNES, G.H.S.; SANTOS JÚNIOR, H.; GRANGEIRO, L.C.; BEZERRA NETO,
F.; DIAS, C. T.S.; DANTAS, M.S.M. Phenotypic stability of hybrids of Galia
melon in Rio Grande do Norte state, Brazil. Anais da Academia Brasileira de
Ciências, v. 83, n. 12, p. 1421-1434, 2011
33
NING, X.; WANG, X.; GAO, X.; ZHANG, Z.; ZHANG, L.; YAN, W.; LI, L.
Inheritances and location of powdery mildew resistance gene in melon Edisto 47.
Euphytica, v. 176, p. 1-9, 2013.
PERCHEPIED, L.; BARDIN, M.; DOGIMONT, C.; PITRAT, M. Relationship
between loci conferring downy mildew and powdery mildew resistance in melon
assessed by quantitative trait loci mapping. Phytopathology, v. 95, n. 5, p. 556–
565, 2005.
PÉREZ-GARCÍA, A.; ROMERO, R.; FERNÁNDEZ-ORTUÑO, D.; LÓPEZRUIZ, F.; VICENTE, A.; TORÉS, J.A. The powdery mildew fungus Podosphaera
fusca (synonym Podosphaera xanthii), a constant threat to cucurbits. Molecular
Plant Pathology, v. 10, n.2, p. 153-160, 2009.
PERIN, C.; HAGEN, L.; DE CONTO, V.; KATZIR, N.; DANIN-POLEG, Y.;
PORTNOY, V.; BAUDRACCO-ARNAS, S.; CHADOEUF, J.; DOGIMONT, C.;
PITRAT, M. A reference map of Cucumis melo based on two recombinant inbred
line populations. Theoretical Applied Genetic, v. 104, n. 6, p. 1017–1034, 2002.
PITRAT, M. Linkage groups in Cucumis melo L. Journal Heredity, v. 82, n. 5, p.
406-411, 1991.
PITRAT, M. Melon. In: J. PROHENS and F. NUEZ (eds.), Handbook of
plant breeding. Springer, New York. 2008. p. 283-315.
PITRAT, M.; BESOMBLES, D. Inheritance of Podosphaera xanthii resistance in
melon line ‘90625’ In Cucurbitaceae 2008, IXth EUCARPIA Meeting on
Genetics and Breeding of Cucurbitaceae (Pitrat M, eds), INRA, Avignon,
France, p. 135-142, 2008.
34
PITRAT, M.; HANELT, P.; HAMMER, K. Some comments on infraspecific
classification of cultivars of melon. Acta Horticulture, v.510, p.29-36, 2000.
REIS, A.; BUSO, J.A. Levantamento preliminar de raças de Sphaerotheca
fuliginea no Brasil. Horticultura Brasileira, v. 122, n.3, p. 628-631, 2004.
SALES JUNIOR, R., DANTAS, F. F.; SALVIANO, A. M.; NUNES, G. H. S.
Qualidade do melão exportado pelo porto de Natal-RN. Ciência Rural, v. 36, n. 1,
p. 286-289, 2006.
SALES JÚNIOR, R.; NUNES, G.H.S.; MICHEREFF, S.J.; PEREIRA, E.W.L.;
GUIMARÃES, I.M. Reaction of families and lines of melon to powdery mildew.
Horticultura Brasileira, v. 29, n. 3, p. 382-386, 2011.
SEBASTIAN, P.; SCHAEFERB, H.; TELFORD, I.R.H.; RENNER, S.S.
Cucumber (Cucumis sativus) and melon (C. melo) have numerous wild relatives in
asia and australia, and the sister species of melon is from Australia. Proceedings
National Academy Science USA, v. 107, p. 14269–14273, 2010.
SEDLÁROVÁ, M.; LEBEDA, A.; MIKSIKOVA, P.; DUCHOSLAV, M.; B.
SEDLAKOVA, B.; McCREIGHT, J.D. Histological aspects of Cucumis melo PI
313970 resistance to Podosphaera xanthii and Golovinomyces cichoracearum.
Journal of Plant Diseases and Protection, v. 116, n.4, p. 169-176, 2009.
SHISHKOFF, N. The name of the cucurbit powdery mildew: Podosphaera (sect.
Sphaerotheca) xanthii (Castag.) U. Braun & N. Shish. comb. nov. Phytopathology
90:S133, 2000.
SITTERLY W. R. 1978. Powdery mildews of cucurbits. In: SPENCER, D.M., ed.
The powdery mildews. NY: Academic Press, pp. 359- 379. 1978.
35
TANKSLEY, S. D. Mapping polygenes. Annual Review of Genetic, v. 27, n. 1, p.
205-233, 1993.
TEIXEIRA, A. P. M.; BARRETO, A,; CAMARGO, L.E.A. (2008) An AFLP
marker linked to the Pm-1 gene that confers resistance to Podosphaera xanthii race
1 in Cucumis melo. Genetics Molecular Biology, v. 31, n. 2, p. 547–550, 2008.
VIANA, F. M. P. Recomendações para o controle das principais doenças que
afetam a cultura do melão na região Nordeste. Fortaleza: Embrapa
Agroindústria Tropical, 2001. 6 p. (Embrapa Agroindústria Tropical. Circular
Técnica, 12).
WANG, X.; LI, G.; GAO, X.; XIONG, L.; WANG, W.; HAN, R. Powdery mildew
resistance gene (Pm-AN) located in a segregation distortion region of melon LGV.
Euphytica, v. 180, n. 3, p. 421–428, 2011.
WHITAKER, T. W.; DAVIS, G. N. Cucurbits: botany, cultivation, and
utilization. London: [s.n], 1962. 249 p.
YUSTE-LISBONA, F.J.; LÓPEZ-SESÉ, A.L.; GÓMEZ-GUILLAMÓN, M.L.
Inheritance of resistance to races 1, 2 and 5 of powdery mildew in the melon TGR1551. Plant Breeding, v. 129, n.1, p. 72-75, 2010.
YUSTE-LISBONA, F.J.; CAPEL, C.; GOMEZ-GUILLAMON, M.L.; CAPEL, J.;
LOPEZ-SESE, A.I.; LOZANO, R. Codominant PCR-based markers and candidate
genes for powdery mildew resistance in melon (Cucumis melo L.). Theoretical
Applied Genetic, v.122, n.4, p.747-758, 2011a.
ZHANG, C.; REN, Y.; GUO, S.; HAIYING ZHANG, H.; GONG, G.; DU, Y.;
XU, Y. Application of comparative genomics in developing markers tightly linked
36
to the Pm-2F gene for powdery mildew resistance in melon (Cucumis melo L.).
Euphytica, v. 181, n. 2, p. 1-12, 2012.
37
CAPÍTULO 1
CARACTERIZAÇÃO MORFOLÓGICA E MOLECULAR DE
ACESSOS DE MELOEIRO RESISTENTES A Podosphaera xanthii
38
RESUMO
NUNES, Elaíne Welk Lopes Pereira. Caracterização morfológica e molecular de
acessos de meloeiro resistentes a Podosphaera xanthii. 2014. 125p. Tese
(Doutorado em Agronomia/Fitotecnia) – Universidade Federal Rural do SemiÁrido (UFERSA), Mossoró-RN, 2014.
O oídio causado por Podosphaera xanthii limita a produção de melão em todo o
mundo. O uso de cultivares resistentes é a principal estratégia para controlar essa
doença. O objetivo deste trabalho foi avaliar cinquenta e seis acessos de melão de
diferentes origens geográficas para resistência a P. xanthii usando inoculação
artificial em condições de casa de vegetação em Valência, Espanha. Os acessos
resistentes C-AC-02, C-AC-09, C-AC-15, C-AC-34 e
AM55-1A foram
caracterizados com caracteres morfológicos e marcadores microssatélites. Os
acessos C-AC-02, C-AC-09, C-AC-15, C-AC-34 exibiram características da
variedade botânica momordica, enquanto o acesso AM55-1A exibiu características
da variedade botânica acidulus. A caracterização molecular confirmou os
resultados observados na caracterização morfológica. Os acessos identificados
podem ser úteis como fontes de resistência em programas de melhoramento para P.
xanthii.
Palavras-chave: Cucumis melo L. Oídio. Germoplasma. Microssatélites. Prémelhoramento.
39
ABSTRACT
NUNES, Elaíne Welk Lopes Pereira. Morfological and molecular
characterization of melon accessions resistant to Podosphaera xanthii. 2014.
125p. Thesis (Doctorate in Agronomy/Crop Science) – Universidade Federal Rural
do Semi-Árido (UFERSA), Mossoró-RN, 2014.
Powdery mildew caused by Podosphaera xanthii limits to production of melon in
worldwide. Cultivars resistant are main strategy to control Powdery mildew. The
aim objetive of the present work was evaluate fifty-six melon accessions with
different geographical origins for resistance to P. xanthii using artificial
inoculation procedure under greenhouse conditions in Valencia, Spain. The
resistant accessions C-AC-02, C-AC-09, C-AC-15, C-AC-34 and AM55-1A were
characterized with morphological traits and microsatellites markers.
The
accessions C-AC-02, C-AC-09, C-AC-15, C-AC-34 exhibited characteristics of
botanical variety momordica while the accession AM55-1A exhibited
characteristics of botanical variety acidulus. The molecular characterization
confirmed the results observed in morphological characterization. The accessions
identified may be useful as sources of resistance in breeding programs against P.
xanthii.
Key Words: Cucumis melo. Powdery mildew. Germplasm. Microsatellites. Prebreeding.
40
1 INTRODUÇÃO
O oídio é uma das principais doenças fúngicas da cultura do melão em
todas as partes do mundo. Essa doença é ocasionada pelas espécies Podosphaera
xanthii e Golovinomyces cichoracearum (KUZUYA et al., 2006).
As duas
espécies foram detectadas em condições de casa de vegetação no Estado do Paraná,
ocasionando oídio em diversas cucurbitáceas de importância econômica (AGUIAR
et al., 2012). Na região Nordeste, apenas a espécie P. xanthii foi detectada (SALES
JÚNIOR et al., 2011).
A doença é caracterizada pelo aparecimento de um crescimento branco e
pulverulento correspondente ao micélio, conidióforos e conídios do fungo. Sob
condições ideais para o desenvolvimento do fungo em hospedeiro com alta
suscetibilidade, as plantas severamente atacadas perdem o vigor e ocorre
desfolhamento prematuro, tendo como consequência a redução da produtividade
(KUZUYA et al., 2006). A redução da produtividade se deve basicamente à
diminuição da área foliar para fotossíntese (VIANA et al., 2001; SALES JUNIOR
et al., 2011). Foram estimadas perdas de produção próximas a 50% em Cuba
(DELGADO; LEMUS, 2004). Todavia, a experiência acompanhando cultivos em
talhões de meloeiro junto ao setor produtivo no Agropolo Mossoró-Assu tem
mostrado estimativas de perdas superiores em razão da redução da qualidade do
fruto.
O controle do oídio do meloeiro tem sido realizado pela aplicação de
fungicidas a base de enxofre (HOLLOMON; WHEELER, 2002) e, ou, pelo uso de
cultivares resistentes (McCREIGHT, 2006; DHILLON et al., 2012). Não obstante,
nos últimos anos, em razão de pressões dos consumidores por alimentos com
menor quantidade de produtos químicos fitossanitários, tem sido dado um grande
enfoque ao controle genético. O controle genético tem a vantagem de ser seguro ao
ambiente, ter fácil adoção e ser complementar a outros métodos de controle.
Uma das primeiras ações para se obter cultivares resistentes é a
identificação de fontes de resistência no germoplasma disponível. Historicamente,
41
as principais fontes de resistência aos dois patógenos causadores de oídio são
provenientes da Índia, especialmente da variedade botânica momordica
(DHILLON et al., 2012). Introduções momordica como PI 124111, PI 124112, PI
414723 e linhagem ‘MR-1’ têm sido utilizadas em programas de melhoramento
genético (PITRAT, 2008). A primeira cultivar resistente ao oídio, ‘PMR Nº 45’, foi
obtida a partir do cruzamento entre o acesso resistente #525 da variedade
momordica e a cultivar ‘Hales Best’ (JAGGER; SCOTT, 1937). Além de acessos
momordica, fontes de resistência pertencentes às outras variedades botânicas foram
identificadas, tais como o acesso aciculus TGR 1551 proveniente de Zimbábue e
resistente às raças 1, 2 e 5 (YUSTE-LISBONA et a., 2010) e o acesso PI 313970
(McCREIGHT, 2003). Por outro lado, em razão da variabilidade na população do
patógeno é necessário um trabalho contínuo de busca de novas fontes de resistência
em bancos de germoplasma do mundo todo (HOSOYA et al., 1999).
O meloeiro é a mais polimórfica dentre as cucurbitáceas do gênero
Cucumis, tendo germoplasma, disponível em várias partes do mundo (BURGER et
al., 2010). Mesmo tendo seus centros de origem, domesticações primária e
secundária em regiões distantes do Brasil, existem variedades tradicionais
adaptadas às diferentes condições edafo-climáticas nacionais. As variedades
tradicionais de meloeiro, introduzidos desde o século XVI pela imigração, ainda
existem devido aos trabalhos de seleção realizados em vários ciclos por pequenos
agricultores. As referidas variedades têm sido coletadas na agricultura de
subsistência de vários estados do Nordeste brasileiro, bem como em outros estados
(DELWING et al., 2007).
Todavia, existe carência de informações sobre a reação do germoplasma
nacional aos principais patógenos da cultura, inclusive o agente causal do oídio, P.
xanthii.
Sendo, portanto, necessárias ações de pesquisas que permitam a
identificação de fontes de resistência para as principais pragas e doenças
importantes na região. Também existem carências de caracterização de acessos
quanto às características quantitativas e qualitativas de frutos, sendo essa uma das
limitações para o pouco uso do germoplasma disponível dessa cucurbitácea.
42
O presente trabalho que teve o objetivo de identificar e caracterizar
morfológica e molecularmente fontes de resistência a P. xanthii.
2 MATERIAL E MÉTODOS
2.1 Avaliação da reação de acessos a P. xanthii
2.1.1 Local
O experimento foi conduzido no período de junho a julho 14/06/2012 a
31/07/2012 na casa de vegetação e Laboratório de Melhoramento Genético de
Cucurbitáceas do Instituto de Conservación Y Mejora de La Agrodiversidad
Valenciana (COMAV) na Universidad Politénica de Valencia (UPV), em Valencia,
Espanha. O município de Valencia, na Comunidad Valenciana, está situado a uma
latitude norte de 39° 28' 11’’, longitude 0° 22' 38’’ a oeste de Greenwich e tem
13,0 m de altitude acima do nível do mar. Durante o período de execução do
experimento, a temperatura média na casa de vegetação foi de 27,8ºC e a umidade
relativa do ar de 61,5%.
2.1.2 Germoplasma
Foram avaliados 56 acessos do Banco de germoplasma do Instituto de
Conservación Y Mejora de La Agrodiversidad Valenciana (COMAV) oriundos de
diversas partes do mundo (Tabela 1). Dentre os acessos avaliados, foram incluídas
dez cultivares diferenciadoras de raças de P. xanthii (JAHN et al., 2002). Entre os
acessos, quatro pertencem à Coleção de Germoplasma da Universidade Federal
Rural do Semi-árido (UFERSA).
No presente estudo, visando à identificação de raça(s), foram utilizadas dez
diferenciadoras MR1; WMR29; PMR5; PMR6; PMR45; Edisto 47; Véndrantais;
PI414723; PI124112 e PI124111.
43
Tabela 1. Acessos de meloeiro avaliados para reação a Podosphaera xanthii.
Valencia, UPV, 2014.
Acesso
C-AC-02
Grupo
momordica
Origem
Brasil
Acesso
PI 124112
Grupo
momordica
Origem
Índia
C-AC-09
momordica
Brasil
PI 482393
agrestis
Zimbábue
C-AC-15
momordica
Brasil
ASI-C-11
ameri
Geórgia
C-AC-34
momordica
Brasil
PI 185111
agrestis
Ghana
Ra-chibber-1A
agrestis
Índia
PI 164320
chito
Índia
AHK-119-1B
agrestis
Índia
C-30
makuwa
Japão
WM-3-1B
agrestis
Índia
Pat-81
conomon
Coreia
WM-7-1D
agrestis
Índia
CUM-287
agrestis
Nigéria
WM-9-2A
agrestis
Índia
PI 436534
agrestis
Senegal
WM-9-2B
agrestis
Índia
C-61
inodorus
Espanha
WN-19-1F
agrestis
Índia
PI 167057
flexuosus
Turquia
WM-22
agrestis
Índia
ASI-C-5
ameri
Uzbequistão
WM-24-2D
agrestis
Índia
PI 505602
acidulus
Zambia
WN-44-1A
agrestis
Índia
PI 482429
agrestis
Zimbabue
WM-64-2A
agrestis
Índia
Freeman’s C.
conomon
Coreia
SM-81
momordica
Índia
Paul
conomon
Japão
SM-113-B
momordica
Índia
PI 161375
conomon
Japão
AM-78-1B
momordica
Índia
I-180
dudaim
Afeganistão
AM-7-2B
momordica
Índia
Silka
acidulus
Índia
AM55-1A
acidulus
Índia
I-188
flexuosus
Arabia
PI-414723
momordica
Índia
Tayer 7
agrestis
Sudão
PMR-5
cantaloupensis
USA
Tendelti
agrestis
Sudão
PMR-6
cantaloupensis
USA
Khurtagat
tibish
Sudão
PMR-45
cantaloupensis
USA
BC1-I-19
tibish
Sudão
‘MR-1’
momordica
Índia
F1-I-199
tibish
Sudão
WMR-29
cantaloupensis
USA
Gulf Cost
cantaloupensis
USA
Edisto 47
cantaloupensis
USA
TGR-1551
acidulus
Zimbabue
‘Véndrantais’
cantaloupensis
França
AR-HBJ
cantaloupensis
USA
44
2.1.3 Obtenção e manutenção do inóculo
Foi utilizado o isolado de Podosphaera xanthii UP-PX-01 coletado em uma
planta do terceiro retrocruzamento da população da linhagem C-61’ (tipo pele de
sapo e variedade inodorus) e C-30 (Grupo makuwa) oriundo da casa de vegetação
na Universidad Politécnica de Valencia (UPV), em Valencia, Espanha.
O isolado foi mantido por inoculações periódicas a cada 30 dias em plantas
da linhagem C-61’. As inoculações foram realizadas em cotilédones e folhas de
plantas no estágio de três folhas verdadeiras com o auxílio de pincel com cerdas de
camelo nº 2, previamente desinfestado em álcool 70%. As plantas inoculadas
foram mantidas em casa de vegetação isoladas e cultivadas em vasos plásticos com
capacidade de 3 litros, preenchidos com substrato comercial Huminsubstrat N3®.
2.1.4 Inoculação e Avaliação
A inoculação e a avaliação foram feitas em casa de vegetação isolada em
plantas cultivadas em vasos de 1 litro, preenchido por substrato comercial
supracitado. A inoculação foi feita 20 dias após a semeadura em plantas no estágio
de três folhas verdadeiras conforme metodologia empregada por McCreight
(2003). Realizou-se a avaliação nas folhas aos 25 dias após a inoculação utilizando
a escala de notas de 1 a 9. Foram feitas adaptações nos critérios de classificação de
resistência/susceptibilidade definidos por McCreight (2003). Assim sendo, as
seguintes classes de reação foram definidas: Resistente (R) [1;3,9], resistência
intermediária (IR) [4,0;5,9]; Suscetível (S) [6,0;6,9] e altamente suscetível (AS)
[7;9].
A escala de notas utilizada para a avaliação da reação dos acessos a P.
Xanthii conforme McCreight (2003), 1: Sem sintomas da doença; 2: Traços de
hifas e sem esporulação na superfície adaxial; 3: Hifas restritas sem esporulação na
superfície adaxial; 4: Poucas colônias e com esporulação na superfície adaxial; 5:
Colônias espalhadas e esporulando na superfície adaxial; 6: Numerosas colônias
esporulando na superfície adaxial; 7: Aproximadamente ≅ 50% da superfície
45
adaxial coberta com hifas e esporos com poucas colônias na região abaxial e
abundante esporulação; 8: Mais de 50% da superfície adaxial coberta com hifas e
esporos com colônias espalhadas na região abaxial e abundante esporulação e 9:
Mais de 75% da superfície adaxial coberta com hifas e esporos com numerosas ou
coalescentes colônias na região abaxial e abundante esporulação.
2.1.5 Delineamento e Análises estatísticas
O delineamento utilizado foi o inteiramente casualizado com cinco
repetições. A unidade experimental foi constituída por um vaso, com uma planta.
Os dados foram avaliados de acordo com o teste não paramétrico de KruskalWallis, com nível nominal de significância de 5% de probabilidade (α = 0,05). A
análise foi realizada utilizando o Software SAS Versão 9.2® (SAS INSTITUTE,
2005).
2. 2 Caracterização morfológica dos acessos
2.2.1 Local
A caracterização foi realizada na Horta didática do Departamento de
Ciências Vegetais da Universidade Federal Rural do Semi-Árido (UFERSA) entre
os meses de setembro e novembro de 2013, no município de Mossoró-RN, situado
na latitude Sul 5º 11’, longitude 37º 20’ a oeste de Greenwich e com altitude de
18 m. Conforme a Classificação de Köppen, o clima é do tipo BSwh’, ou seja,
seco e muito quente, com duas estações climáticas bem definidas, a seca que
ocorre de junho a janeiro e a outra chuvosa de fevereiro a maio (CARMO FILHO;
OLIVEIRA, 1989). Os valores médios da temperatura máxima, temperatura
mínima, umidade relativa do ar e precipitação pluviométrica durante o período de
setembro a novembro da caracterização dos acessos, respectivamente: 33,3°C;
23°C; 64,3°C e 0.
46
O solo do local foi classificado como Argissolo Vermelho-Amarelo
Equivalente Eutrófico (EMBRAPA, 1999). Foram retiradas amostras simples na
profundidade de 0 a 20 centímetros para análise química. Destas, formou-se a
amostra composta, que foi preparada e enviada ao laboratório de análises química
e física do solo da UFERSA para análise. O resultado da análise do solo com pH=
6,60 da área experimental apresentou os seguintes teores: Ca= 8,10; Mg =2,87;
Al= 0,10; H + Al= 1,30 e k= 0,82 em meq/100ml. Os teores em ppm de P= 23,50;
Na= 17,00 e M.O= 1,3.
2.2.2 Germoplasma
Foram caracterizados os acessos C-AC-02, C-AC-09, C-AC-15, C-AC-34,
AM55-1A avaliados como resistentes a P. xanthii no ensaio realizado em
Valencia na Espanha e os híbridos ‘Vereda’ e ‘Olimpic’. O híbrido ‘Vereda’ é do
tipo amarelo e pertence à variedade botânica inodorus. O híbrido ‘Olimpic’ é do
tipo cantaloupe e pertence à variedade botânica cantaloupensis.
2.2.3 Caracterização morfológica
O preparo do solo constou de uma aração e uma gradagem, seguida de
sulcamento
em
linhas,
espaçadas
de
2,0
m
com
profundidade
de
aproximadamente 20 cm, onde foi realizada a adubação de fundação, utilizandose 6,0 t ha-1 de esterco bovino e 120 kg ha-1 de P2O5. Os adubos foram aplicados
nos sulcos de plantio e incorporados com enxada manual. Após a mistura do
adubo na linha de plantio foram estendidas manualmente as mangueiras e
colocou-se o mulching preto/prata com 1,0 metro de largura.
As sementes dos acessos/híbridos foram colocadas em uma estufa agrícola
por um dia, a uma temperatura de 37ºC. Após a emissão da radícula, foram
transferidas para bandejas de polietileno com 128 células, contendo substrato
comercial Plantmax®, sendo colocada uma plântula por célula, onde permaneceu
47
por 15 dias. O transplantio foi realizado quando as mudas apresentavam a
primeira folha definitiva expandida.
A irrigação foi realizada com uso de mangueiras com gotejadores de 1,6 l.
hora-1 de vazão. A fertirrigação foi feita com base em diferentes concentrações da
solução nutritiva proposta por Furlani (1999). O espaçamento adotado foi de 2,0
metros entre linha e 0,3 metros entre plantas.
As colheitas foram realizadas manualmente no mês de novembro. Os
frutos foram retirados das plantas com auxílio de canivetes, identificados com
marcadores permanentes e colocados em monoblocos para serem transportados
para o Laboratório de Pós-colheita da Universidade Federal Rural do Semi-Árido
para avaliação dos caracteres estudados.
2.2.4 Caracteres avaliados
A avaliação foi realizada por caracteres qualitativos e quantitativos. Os
caracteres qualitativos utilizados foram os seguintes: cor do epicarpo, cor do
mesocarpo, rachadura de fruto, expressão sexual, abscisão do pedúnculo e aroma
(IPGRI, 2003). As avaliações foram feitas pela observação visual das
características.
Os caracteres quantitativos avaliados foram:
a) Número de frutos por planta: razão entre o número total de frutos e o
número de plantas total da parcela;
b) Massa média do fruto: todos os frutos da amostra foram pesados com
uso de uma balança, expressa em gramas (g);
c) Índice de formato: obtida pela relação entre diâmetro longitudinal e
diâmetro transversal, medido na região equatorial do fruto com auxílio
de um paquímetro;
d) Espessura da polpa: utilizando um paquímetro foi tomada na região
equatorial, a partir dos frutos seccionados transversalmente, a parte do
fruto que contém o início da cavidade placentária até o início da
formação da casca, expressa em milímetros (mm);
48
e) Firmeza da polpa: após corte transversal do fruto, foram tomadas três
leituras por fruto em cada lado da polpa, na região equatorial,
equidistantes em relação ao comprimento e à espessura da polpa. Foi
utilizado um penetrômetro Wagner® com pluncher de ponta cônica de
8,0 mm (Fruit Pressure Tester – FT 011. MOD) para medir a
resistência na polpa, os resultados foram expressos em Newton (N);
f) Sólidos solúveis: foi retirada uma amostra de aproximadamente 2/3 da
espessura da polpa na região equatorial do fruto, no sentido da
cavidade. A amostra foi pressionada manualmente até que uma parte
do suco fosse depositada em um refratômetro digital (Digital
Refractometer Palette 100), e os resultados foram expressos em º Brix.
2.2.5 Análises estatísticas
O ensaio de caracterização foi conduzido em delineamento de blocos
casualizado com três repetições, sendo a parcela composta por uma linha com dez
plantas. A área útil da parcela correspondeu as oitos plantas centrais, enquanto
que as duas plantas nas extremidades formaram a bordadura.
Para os caracteres quantitativos realizou-se a análise de variância em um
modelo composto pelo efeito de blocos como aleatório e o efeito de acesso como
fixo. O agrupamento dos acessos foi realizado pelo método de Scott-Knott (1974).
Todas as análises foram processadas no programa SISVAR Versão 5.3 (Build 77)
(FERREIRA, 2011).
2.3 Caracterização molecular dos acessos
2.3.1 Local
A caracterização molecular foi realizada no Laboratório de Biologia
Molecular do Departamento de Ciências Vegetais da Universidade Federal Rural
do Semi-Árido (UFERSA).
49
2.3.2 Germoplasma
Os acessos C-AC-02, C-AC-09, C-AC-15, C-AC-34 e AM55-1A,
considerados resistentes a P. xanthii mais 18 acessos padrões de referência
(Tabela 2) foram caracterizados molecularmente com SSR.
Os acessos de
referências contemplam a variabilidade das variedades botânicas observadas e
classificadas na espécie C. melo (ESTERAS et al., 2013).
Tabela 2. Código, origem e variedade dos acessos usados como padrões de
referência, 2014.
Acesso
Código*
Origem
Variedade
Cucumis melo subespecies melo
Amaral**
In-01
Rijk Zwaan®
Mandacaru**
In-02
Fitó®
**
In-03
Rijk Zwaan®
Natal
Piñonet Piel de sapo
In-04
Espanha
Kizil Uruk
Ame
Uzbequistão
Dulce
Can-01
USA
Vedrantais
Can-02
França
Snakemelon
Fle
Arábia
Queen´s Pocket
Dud
Afeganistão
Melon
Cucumis melo subespecies agrestis
Kharbuja
PI 124112
MR1
PI 161375
PI 482420, TGR1551
Tibish
PI 164320, Velleri
PI 185111, 15591
Wild Chibbar
Mom-01
Mom-02
Mom-03
Con
Aci
Tib
Chi
Ag-01
Ag-02
Índia
Índia
Índia
Coréia
Zimbábue
Sudão
Índia
Gana
Punjab
inodorus
inodorus
inodorus
inodorus
ameri
cantalupensis
cantalupensis
flexuosus
dudaim
momordica
momordica
momordica
chinensis
acidulus
tibish
chito
agrestis
agrestis
50
2.3.3 Extração de DNA
DNA de cada um dos acessos foi extraído a partir do protocolo
desenvolvido por Doyle e Doyle (1990), com modificações. As folhas jovens
foram maceradas em nitrogênio líquido e transferidas para microtubos estéreis de
2 mL. O tampão de extração foi preparado contendo 100 μL de Tris-HCl (100
μM), 280 μL de NaCl (1,4M), 400 μL de EDTA (20mM), 300 mL de CTAB
(2,0%), 0,01 g de PVP40 (1,0%), 278 μL água Miliq e 2 μL de β-mercaptoetanol
(0,2%), e logo após pipetou-se 700 μL desse tampão de extração, os quais foram
colocados nos microtubos. Os microtubos foram vertidos e colocados em banhomaria à temperatura de 65 °C durante 40 minutos, sendo estes, agitados a cada 10
minutos. Em seguida, foram adicionados 800 μL de álcool isoamílico (24:1) nos
microtubos, os quais foram vertidos e centrifugados à 14.000 rpm, durante 7
minutos e, em seguida, transferiu-se a fase superior (aquosa) para novo
microtubo, sendo esta etapa, repetida mais uma vez. Logo após, adicionou-se à
fase aquosa 400 μL de isopropanol gelado, homogeneizando a solução até a
formação do pellet. As amostras foram colocadas em congelador por 2 horas e
posteriormente centrifugadas à 14.000 rpm durante 10 minutos. Para limpeza do
pellet, adicionou-se 1 ml de etanol 70% no microtubo, sendo os mesmos
centrifugados à 14.000 rpm durante 5 minutos, descartando o sobrenadante. Em
seguida adicionou-se 1 ml de etanol 90% aos microtubos, os quais foram
centrifugados novamente à 14.000 rpm durante 5 minutos. O sobrenadante foi
descartado novamente, deixando apenas o pellet no microtubo. As amostras foram
colocadas em estufa à 70 °C durante 20 minutos, e logo após, adicionou-se 50 μL
de RNAse nos microtubos, os quais foram incubados à 37 °C em banho-maria. A
quantificação de DNA foi realizada em géis de agarose a 1% (p/v), comparandose visualmente a intensidade das bandas do DNA dos genótipos extraídos, com
bandas de peso molecular conhecido de 1 kb. Após a quantificação, as amostras
foram diluídas em água ultrapura e foram padronizadas em 10 ng μL-1 para serem
utilizados nas reações de PCR (Polymerase Chain Reaction).
51
2.3.4 Reação de PCR
As reações de amplificação foram feitas em um volume total de 10 μL,
contendo 10 mM (pH 8,3) de Tris-HCl, 50 mM de KCl, 2,5 mM de MgCl2,
0,25mM de cada dNTP, 250 nM de cada um dos 15 diferentes primers SSR
(CMMS1-3; CMMS2-3; CMMS3-2; CMMS4-3; CMMS12-6; CMMS15-4;
CMMS22-2; CMMS24-3; CMMS30-3; CMMS33-1; CMMS33-2; CMMS34-8;
CMMS34-10; CMMS35-4 e CMMS35-5) (Tabela 3), 0,5 U de Taq DNA
polimerase e, aproximadamente, 10 ng de DNA. As amplificações foram realizadas
em termociclador Biocycler de acordo com o seguinte programa: 94°C por 2 min +
40 ciclos de 94°C por 30 seg, 54°C por 1 min, 72°C por 1 min, extensão final de
72°C por 4 min e redução a 15°C.
As amostras foram diluídas em água ultrapura e foram padronizadas em 10
ng/ μL para serem utilizadas nas análises de microssatélites. Após a reação foram
adicionados 10 μL de solução contendo 0,05% de azul de bromofenol, 0,05% de
xyleno cianol, EDTA 10mM e formamida 95%. Os produtos de amplificação
foram desnaturados a 95ºC por 5 mim no termociclador.
Os fragmentos amplificados foram separados em eletroforese vertical em
gel de poliacrilamida 6%, corados com nitrato de prata, conforme Creste et al.
(2003). O padrão de peso molecular de 50 pares de bases foi utilizado para
identificar os fragmentos amplificados.
2.3.5 Análises estatísticas
Foi estimada a similaridade genética de acordo com Nei em 1983 (CRUZ,
2011). O método usado para realizar a análise de agrupamento foi feito com base
na matriz de dissimilaridade do tipo hierárquico UPGMA (Unweighted Pair Group
Method with Arithmetic Mean). As análises de divergência genética foram
processadas no programa Powermarker (LIU; MUSE, 2005). O dendrograma foi
construído com o programa Mega 4.0 (TAMURA et al., 2007). A Análise Fatorial
52
de Correspondência (AFC) foi realizada conforme descrito por Perrier et al.
(2003).
53
Tabela 3. Primers de microssatélite sintetizados para Cucumis melo. Mossoró-RN, UFERSA, 2014.
Primer
Sequencia
Scaffold1
LG1
CMMS1-3
TTGAATGATTGGAGGGAAGATAACG / CAAATATTGATGGATTTAATATATT
CM3.5_scaffold00022
V
CMMS2-3
ATCACCCACCCCACCACTGCCAAAA / CCTTGAAAAACCACCAACATAACAC
CM3.5_scaffold00022
V
CMMS3-2
AGTTTTTGGGCATTTTTAGTTGGAT / GGCTTATCTCCCACCCAACCATTCT
CM3.5_scaffold00012
II
CMMS4-3
ACCGAAATCATAAGGAACATAAGAG / TATGAGCTGTGTTGTGTATGAAAAC
CM3.5_scaffold00026
I
CMMS12-6
AACATGATGTGTTTACCAACTTTTT / GGTTAAGGGAAAGTGAAGAGATGGT
CM3.5_scaffold00038
?
CMMS15-4
GTCCGCCATCGCCACTACAAATCAA / CTCCGTAAAACCTTCTTCCTCTCTC
CM3.5_scaffold00011
IV
CMMS22-2
CGTTATACAAGATAGAGATAGAGAG / TTCAACTAATCCCCAAGACAAACAA
CM3.5_scaffold00067
I
CMMS24-3
GAGGGAGAGAGTTTGTAAAAAAATG / TCGCCAATTACATTACAACCTTTTC
?
VI
CMMS30-3
TTCCCACCAGCCCAACGGACACACT / GAGATACAGAAACGACGACTAACCT
CM3.5_scaffold00081
VII
CMMS33-1
TGTAATAGGATGACCAAGGGGAGTT / TTCAGGAGCTACAACAAGATTTCAA
CM3.5_scaffold00004
XII
CMMS33-2
GCTACTTTTTATGGCGGCAGTGACG / ATTCGGATGATTATTCTTCGCAGTT
CM3.5_scaffold00063
?
CMMS34-8
TTTCTTACTTTTTGGTTTGGTTCTG / GGCGCTGTGGTGAGTGTCGGGAGAG
CM3.5_scaffold00006
VI
CMMS34-10
GGGGTGTGAAGCTGAAGGCAAAGTC / AAAGGAAGAAGAAGAAAAAGGAGAA
CM3.5_scaffold00016
X
CMMS35-4
ACGGATACATCGAGGAGACTTCATG / GTCAGCTTCAACCCTTTACTTTTTC
CM3.5_scaffold00001
XII
CMMS35-5
AACGGGATTTTGGAGGCATATTCGG / CTCCCCAGTGTATCAGCCAAATCTC
CM3.5_scaffold00005
IX
1
Obtido pelas informações presentes na base de dados MELOGEN (MELOGEN, 2003).
2 Fonte: CHIBA et al., (2003).
55
3 RESULTADOS
3.1 Avaliação da reação de acessos a Podosphaera xanthii
Em razão da variabilidade genética existente na população de P. xanthii é
importante a identificação da raça ou raças presentes nas condições de casa de
vegetação nas quais foi desenvolvida a avaliação. No presente estudo, visando a
identificação de raça(s), foram utilizadas dez diferenciadoras (Tabela 4). As
diferenciadoras PMR-45, ‘Véndrantais’, WMR-29 e ‘Hales Best Jumbo’ (HBJ)
foram suscetíveis, enquanto as diferenciadoras PMR-5, PMR-6, PI 414723, Edisto
47, PI 124112 foram resistentes. A inesperada reação de suscetibilidade da
linhagem ‘MR-1’ a reação das diferenciadoras não permitiu a identificação da
raça presente na casa de vegetação.
Observou-se efeito significativo entre acessos (χ2 = 112,78; p < 0,001)
para a reação a P. xanthii. Os acessos foram discriminados nas quatro classes de
reações definidas no presente trabalho (Tabela 4).
A maioria dos acessos (55,36%) avaliados foi altamente suscetível ao
fungo com notas variando de 7,0 (aproximadamente ≅50% da superfície adaxial
coberta com hifas e esporos com poucas colônias na região abaxial e abundante
esporulação) a 9,0 (mais de 75% da superfície adaxial coberta com hifas e esporos
com numerosas ou coalescentes colônias na região abaxial e abundante
esporulação).
Os acessos PI 436534, SM-113-B, C-30 e Pat-81 foram suscetíveis com
numerosas colônias esporulando na superfície adaxial (Tabela 4). O primeiro é de
origem africana, o segundo de origem indiana e os dois últimos do extremo
oriente (Japão e Coreia, respectivamente).
Os acessos WN-19-1F, WM-24-2D e WM-64-2A de origem indiana, o
acesso PI 482429 de origem africana e o acesso Freeman’s C. de origem coreana
foram classificados com medianamente resistentes (Tabela 4).
56
Tabela 4. Média da severidade da doença na folha e reação de acessos de meloeiro
a P. xanthii. Valencia, UPV, 2014.
Acesso
Nota
C-AC-02
C-AC-09
C-AC-15
C-AC-34
AM55-1A
TGR- 1551
WM-3-1B
WM-7-1D
WM-9-2A
WM-9-2B
WN-19-1F
WM-22
WM-24-2D
WN-44-1A
WM-64-2A
SM-81
SM-113-B
AM-78-1B
AR-HBJ
PI 124112
PI-414723
PMR-5
PMR-6
PMR-45
‘MR-1’
WMR-29
Edisto 47
‘Véndrantais’
χ2
1,00
1,00
1,00
1,00
1,50
8,00
8,50
9,00
8,00
9,00
4,50
8,00
4,50
7,50
4,00
7,50
6,00
8,00
5,50
2,50
1,00
1,00
1,00
7,00
5,50
5,50
2,50
9,00
Acesso
Reação
R
Ra-chibber
R
PI 482393
R
ASI-C-11
R
PI 185111
R
PI 164320
AS
C-30
AS
Pat-81
AS
CUM-287
AS
PI 436534
AS
C-61
IR
PI 167057
AS
ASI-C-5
IR
PI 505602
AS
PI 482429
IR
Freeman’s C.
AS
Paul
S
PI 161375
AS
I-180
S
Silka
R
Snakemelon
R
Tayer 7
R
Tendelti
R
Khurtagat 15
AS
BC1-I-19
S
F1-I-199
S
‘Gulf Cost’
R
AHK-119-1B
AS
AM-7-2B
112,78 (p < 0,001)2
Nota
7,00
7,50
8,00
8,50
7,50
6,50
6,50
7,50
6,50
7,50
9,00
9,00
7,50
4,00
4,50
8,00
7,00
8,00
8,50
9,00
7,50
8,00
9,00
7,50
9,00
7,00
8,00
9,00
Reação
AS
AS
AS
AS
AS
S
S
AS
AS
AS
AS
AS
AS
IR
IR
AS
AS
AS
AS
AS
AS
AS
AS
AS
AS
AS
AS
AS
1
Classificação da reação (R: resistente, IR: resistência intermediária; S: suscetível, AS:
altamente suscetível). 2 Valor de Qui-quadrado (χ2) pelo teste de Kruskal-Wallis. 3Escala de
notas de McCreight (2003).
57
Os acessos C-AC-02, C-AC-09, C-AC-15, C-AC-34 e AM55-1A, sem
sintomas, foram resistentes (Tabela 4). Os cinco acessos são de origem indiana,
porém foram coletados em pequenas propriedades do Nordeste brasileiro, exceto
o AM55-1A (Figura 2). O sexto acesso resistente, TGR 1551, apresentou algumas
plantas com traços de hifas e sem esporulação na superfície adaxial. O referido
acesso foi coletado em Zimbábue no sudeste da África.
Figura 2. Frutos dos acessos identificados como resistentes. Mossoró-RN,
UFERSA, 2014.
58
3.2 Caracterização morfológica dos acessos
A caracterização evidenciou heterogeneidade entre os acessos/linhagens
resistentes e híbridos para todas as variáveis qualitativas e quantitativas avaliadas
nos frutos (Tabelas 5 e 6).
Na caracterização morfológica qualitativa dos acessos resistentes,
observou-se
que
os
acessos
C-AC-02,
C-AC-09,
C-AC-15,
C-AC-34
apresentaram cor do epicarpo creme, mesocarpo branco, expressão sexual
monoica, rachadura do fruto, abscisão do pedúnculo e aroma (Tabela 5),
características marcantes de frutos pertencentes à variedade botânica momordica.
Tabela 5. Caracterização morfológica qualitativa de acessos/híbridos. MossoróRN, UFERSA, 2014.
Acesso/Híbrido
VB
CE
CM
ES
RF
AP
AR
C-AC-02
MOM
Creme
Branca
Mon
Sim
Sim
Sim
C-AC-09
MOM
Creme
Branca
Mon
Sim
Sim
Sim
C-AC-15
MOM
Creme
Branca
Mon
Sim
Sim
Sim
C-AC-34
MOM
Creme
Branca
Mon
Sim
Sim
Sim
AM55-1A
ACI
Verde
Branca
And
Não
Não
Não
‘Vereda’
INO
Amarela
Branca
And
Não
Não
Não
‘Olimpic’
CAT
Verde
Branca
And
Não
Não
Sim
VB: variedade botânica, CE: cor do epicarpo, CE: cor do mesocarpo, ES: expressão sexual,
RF: rachadura do fruto, AP: abscisão do pedúnculo e AR: aroma. MOM: momordica; ACI:
acidulus; INO: inodorus; CAT: cantaloupensis; Mon: monóica; And: andromonóica.
O acesso AM551-1A possui exocarpo de coloração verde, mesocarpo
branco brilhante, expressão sexual andromonóica, frutos sem abscisão, sem
rachaduras e sem aroma (Tabela 5). As características observadas na
caracterização são inerentes à variedade botânica acidulus.
Os híbridos ‘Vereda’ e ‘Olimpic’ apresentaram as características
peculiares aos tipos amarelo e cantaloupe produzidos no Nordeste brasileiro.
59
Concernente à caracterização morfológica com caracteres quantitativos,
os acessos diferiram quanto ao número de frutos por planta, sendo os acessos mais
prolíficos em relação aos híbridos. O acesso AM55-1A foi o mais prolífico com
6,2 frutos por planta; seguido dos acessos C-AC-09, C-AC-15, C-A-34 e C-AC-02
(Tabela 6).
Tabela 6. Caracterização morfológica quantitativa de genótipos de meloeiro.
Mossoró-RN, UFERSA, 2014.
Acesso/Híbrido
NF
MF
IF
EP
FP
SS
C-AC-02
2,7b
2,7a
2,2a
3,8b
14,8c
5,4b
C-AC-09
2,8b
2,7a
2,2a
3,3b
14,2a
5,3b
C-AC-15
2,7b
2,8a
1,9b
3,3b
18,1c
5,2b
C-AC-34
2,7b
2,9a
2,6a
3,9b
19,2c
4,7b
AM55-1A
6,2a
0,8b
2,1a
2,9b
41,3a
4,2b
‘Vereda’
1,1c
1,2b
1,1a
5,7a
28,6b
10,4a
‘Olimpic’
1,2c
1,3b
1,0a
5,9a
27,9b
12,1a
NF: número de frutos por planta; MF: massa média do fruto, em kg; IF: índice de formato;
EP: espessura da polpa, em cm; FP: firmeza da polpa, em N; SS: sólidos solúveis totais, em
°Brix. Médias seguidas pela mesma letra pertencem ao mesmo grupo pelo agrupamento de
Scott-Knott (1974).
Houve variação quanto a massa média do fruto, com valores de 0,8 a 3,5
kg (Tabela 6). Conforme a lista dos descritores do meloeiro publicada pelo IPGRI
(2003), no presente estudo, os frutos do acesso AM55-1A foram classificados de
pequenos a intermediários (≅0,9 kg), os frutos dos híbridos ‘Vereda’ e ‘Olimpic’
são considerados intermediários (1,0 a 1,3 kg), enquanto que os frutos dos acessos
momordica são considerados grandes (> 2,6 kg).
Os frutos variaram quanto ao índice de formato, definido como a relação
entre o comprimento longitudinal e o transversal, com valores entre 1,0 e 2,6
(Tabela 6). Segundo Paiva et al. (2002), frutos com forma esférica têm índice de
60
formato inferior ou igual a 1,0; com forma oval, têm índice de formato entre 1,011,50 e comprido têm valor superior a 1,5. Considerando essa classificação, os
acessos possuem frutos com formato comprido enquanto os híbridos têm frutos de
formato esférico.
Concernente à espessura da polpa, o menor valor foi observado no acesso
AM55-1A (2,9 cm) e o maior valor foi verificado no híbrido ‘Olimpic’ (5,9 cm)
(Tabela 6). Os acessos apresentaram menor espessura de polpa em relação aos
genótipos melhorados (híbridos), formando dois grupos conforme o agrupamento
de Scott-Knott (1974).
A maior firmeza de polpa foi observada no acesso AM55-1A, enquanto os
menores valores foram constatados nos acessos C-AC-02, C-AC-09, C-AC-15 e CAC-34 (Tabela 6).
Quanto ao teor de sólidos solúveis, as estimativas variaram de 4,2
(AM551-A) a 12,1 ºBrix (‘Olimpic’) (Tabela 6). Observou-se que os acessos
possuíam valores muito baixos desse descritor, contrastando com valores elevados
alcançados nos frutos dos híbridos.
3.3 Caracterização molecular
Todos os pares de primers dos marcadores microssatélites foram
informativos para o estudo de caracterização molecular por serem polimórficos
(Tabela 7).
61
Tabela 7. Medidas descritivas para o estudo da diversidade baseado nos
marcadores microssatélites polimórficos em acessos de meloeiro. Mossoró-RN,
UFERSA, 2014.
Marcador
OBS (#%)
CMMS 2-3
24/1,00
CMMS 4-3
21/0,88
CMMS 12-6
21/0,88
CMMS 15-4
20/0,83
CMMS 22-2
20/0,83
CMMS 24-3
23/0,96
CMMS 30-3
22/0,92
CMMS 33-1
24/1,00
CMMS 33-2
24/1,00
CMMS 34-8
24/1,00
CMMS 34-10 24/1,00
CMMS 35-4
24/1,00
CMMS 35-5
24/1,00
Média
23/0,95
NA
3,00
4,00
4,00
3,00
4,00
3,00
5,00
5,00
4,00
4,00
4,00
7,00
5,00
4,23
NG
3,00
4,00
5,00
3,00
8,00
4,00
5,00
6,00
5,00
6,00
5,00
9,00
7,00
5,38
FAP
0,54
0,48
0,57
0,65
0,38
0,41
0,41
0,38
0,44
0,58
0,54
0,25
0,40
0,46
DG
0,60
0,67
0,59
0,49
0,73
0,63
0,71
0,69
0,67
0,58
0,62
0,80
0,73
0,65
HET
0,00
0,00
0,10
0,00
0,20
0,04
0,00
0,83
0,96
0,17
0,42
0,79
0,96
0,34
PIC
0,53
0,62
0,53
0,41
0,68
0,55
0,67
0,63
0,60
0,52
0,57
0,78
0,68
0,60
OBS (#%): observações (número/porcentagem); NA: número de alelos; NG: número de
genótipos; FAP: frequência do alelo principal; DG; diversidade genética; HET:
heterozigosidade; PIC: conteúdo médio de informação polimórfica.
O maior número de alelos foi observado no marcador CMMS 35-4 (7,0
alelos), enquanto o menor valor (3,0) foi observado nos marcadores CMMS 15-4,
CMMS 2-3 e CMMS 24-3, perfazendo uma amplitude de 4,0 alelos. Os 13 pares
de marcadores amplificaram um total de 55 alelos nos 23 acessos, com uma média
de 4,23 alelos/primer.
Com relação ao número de genótipos, o maior valor (9,0) foi observado no
marcador CMMS 35-4 e o menor valor (3,0) nos marcadores CMMS 2-3 e CMMS
15-4 com amplitude média de 6,0 e 5,38 genótipos por loco, respectivamente
(Tabela 7).
Não se constatou grande predominância de alelo principal nos marcadores
(média de 0,46). A maior frequência foi observada no marcador CMMS 15-4
(0,65) e a menor valor (0,25) no marcador CMMS 35-4.
62
Os valores de diversidade genética variaram de 0,49 (CMMS 15-4) a 0,80
(CMMS 35-4), resultando uma amplitude de 0,31. A média estimada foi de 0,65
(Tabela 7).
A maioria dos marcadores apresentou reduzida heterozigosidade com
valores abaixo de 0,20. Todavia, três marcadores (CMMS 33-2, CMMS 35-5 e
CMMS 33-1) se destacaram com heterozigosidade superiores 0,80.
A média
estimada de heterozigosidade foi de 0,34 (Tabela 7).
Os valores de conteúdo de informação polimórfica variaram de 0,41
(CMMS 15-4) a 0,78 (CMMS 35-4), resultando uma amplitude de 0,37. A média
estimada foi de 0,60 (Tabela 7).
O agrupamento conforme a metodologia UPGMA dividiu os acessos nas
variedades botânicas preconizadas em Pitrat (2008) (Figura 3). O método UPGMA
foi eficiente em agrupar os acessos uma vez que a estimativa de correlação
cofenética (CC) entre a matriz de distância e a matriz resultante do processo de
agrupamento foi elevada e significativa (CC=0,87; p < 0,01).
Os acessos C-AC-02, C-AC-09, C-AC-15, C-AC-34 foram agrupados entre
os acessos padrões de melão momordica. (Mom-01, Mom-02 e Mom-03). Da
mesma maneira, o acesso AM55-1A de origem indiana foi agrupado no mesmo
grupo do acesso africano TGR 1551 (Aci), ambos do grupo acidulus, juntamente
com o acesso PI 164320 (Chi) oriundo da Índia (Figura 3).
63
Figura 3. Dendrograma de acessos de meloeiro obtido pelo método de
agrupamento hierárquico UPGMA a partir da matriz de distância de Nei gerada
com informações de 13 marcadores microssatélites. Correlação cofenética
(CC=0,87**). Mossoró-RN, UFERSA, 2014.
Da mesma forma, a análise fatorial de correspondência evidenciou que os
acessos C-AC-02, C-AC-09, C-AC-15, C-AC-34 foram agrupados com os
padrões de melão indiano momordica (Mom-01, Mom-02 e Mon-03) (Figura 4).
O acesso AM55-1A foi agrupado com os padrões de referência Aci e Chi
pertencentes às variedades botânicas acidulus e chito, respectivamente.
64
Figura 4. Dispersão gráfica bidimensional de acessos de meloeiro obtida pela
análise fatorial de correspondência estimada com base em 13 marcadores
microssatélites. Mossoró-RN, UFERSA, 2014.
65
4 DISCUSSÃO
Para a identificação de raças em meloeiro é utilizado um grupo composto
por cultivares diferenciadoras (COHEN et al., 2004). Assim sendo, no ensaio de
busca de novas fontes de resistência à P. xanthii, considerando a reação de
suscetibilidade das diferenciadoras PMR-45, ‘Véndrantais’, WMR-29 e ‘Hales
Best Jumbo’ (HBJ) e a reação de resistência das diferenciadoras PMR-5, PMR-6,
PI 414723, Edisto 47, PI 124112 a raça seria identificada como 4. A raça 4 foi
identificada no sudoeste espanhol (Almería e Málaga) por Del Pino et al (2002).
Estes autores também identificaram as raças 1, 2, e 5 com prevalência da raça 1 e
posterior mudança para equivalência de raças. Mais recentemente Torés et al.
(2009) relataram a presença da raça 3.5 no sudeste espanhol.
Todavia, a reação inesperada de suscetibilidade da diferenciadora ‘MR-1’
não confirmou a raça 4 (Tabela 4). A diferenciadora ‘MR-1’ foi originada da
linhagem 90319 derivada do acesso PI 124111 coletado em Madras na Índia
(THOMAS, 1986; COHEN; COHEN, 1986). A citada diferenciadora é resistente
as raças 0, 1, 2US, 2Fr, 3, 4 e 5 de P. xanthii e as raças 0 e 1 de G. cichoracearum
(BARDIN et al., 1999). Os trabalhos publicados até o final do século XX
apontavam a linhagem ‘MR-1’ como resistente a todos os isolados coletados dos
dois referidos patógenos. Todavia, Křístková et al. (2004) relataram que isolados
de P. xanthii e G. cichoracearum provenientes da República Tcheca eram capazes
de provocar crescimento micelial intenso e esporulação em ‘MR-1’ e PI 124112.
Foi o primeiro relato de suscetibilidade nessas duas diferenciadoras em folhas
verdadeiras, uma vez que Cohen e Eyal (1995) haviam observado em cotilédones.
Nos anos de 2005 e 2009 em campos da Califórnia (USA), McCreight; Coffey
(2011) observaram suscetibilidade em ‘MR-1’, PI 124111, PI 124112 e as demais
diferenciadoras avaliadas no presente trabalho. Somente o acesso PI 313970 foi
resistente a uma nova raça denominada de “S” pelos autores. A observação da
susceptibilidade de ‘MR-1’ do presente trabalho é o primeiro relato na Espanha.
Não obstante, ainda são necessários trabalhos mais detalhados para que possa ser
definida uma nova raça.
66
Existe grande variabilidade nas populações de P. xanthii nas regiões
produtoras de cucurbitáceas em todo o mundo. Até o presente momento foram
identificadas 45 raças (McGREIGHT et al., 2012) e vários patótipos (LEBEDA et
al., 2008) do referido fungo. Em razão disso, a identificação da raça ou raças
prevalentes é uma informação relevante para os melhoristas uma vez que os
esforços devem ser canalizados para desenvolver cultivares resistentes às raças
prevalentes (HOSOYA et al., 2000).
Foram identificados como resistentes os acessos C-AC-02, C-AC-09, CAC-15, C-AC-34 e AM55-1A (Tabela 4). Os acessos não apresentaram sintomas
tanto nos cotilédones (dados não apresentados) quanto em folhas verdadeiras. Os
acessos citados são pertencentes à variedade momordica (Roxb.) Duthie et Fuller
(DHILLON et al., 2007). As características gerais dos frutos da variedade
momordica são a rachadura quando maduros, formato alongado, baixo teor de
sólidos solúveis (<6ºBrix), textura da polpa farinácea, exocarpo fino, aromático e
com abscisão do pedúnculo. Além disso, as plantas são monóicas (DHILLON et
al., 2009). Todas essas características foram observadas nos quatro acessos
resistentes (Tabelas 5, 6).
A variedade momordica foi intensamente cultivada durante o século XX no
norte da Índia e atualmente está presente em quase todas as partes do referido país.
Os frutos imaturos são consumidos crus, cozidos ou em picles (DHILLON et al.,
2007). Por outro lado, espécimes da momordica são cultivados em alguns estados
brasileiros. No Nordeste foram coletados acessos de melão momordica nos Estados
do Rio Grande do Norte, Ceará, Alagoas e Maranhão. Não obstante, acredita-se
que esteja presente em todos os estados nordestinos. Além disso, este tipo de fruto
está presente em pequenos produtores no Sul do país, sendo conhecido como
“melão de neve”, “bola de neve” ou “pepino de neve” (DELWING, 2006). Neitzke
et al. (2009) caracterizando morfologicamente acessos provenientes de pequenos
produtores dos estados do Paraná e do Rio Grande do Sul observaram que o acesso
C-88 foi o mais divergente dos demais acessos e apresentou todas as características
de melão momordica.
67
Os melões momordica tanto no Sul quanto no Nordeste brasileiro são
produzidos por produtores de base agrícola familiar que utilizam variedades
“crioulas” (ou landraces) para o consumo e comercialização. No Rio Grande do
Sul, são utilizados principalmente em forma de doces. No Rio Grande do Norte,
em Mossoró, é comercializado em feiras e supermercados, sendo consumidos
geralmente com açúcar após as refeições ou em sucos em razão de seu baixo teor
de sólidos solúveis.
Por serem frutos endêmicos da Índia, conforme comenta Dhillon et al.
(2009), é de certa forma surpreendente a tradição de cultivo e a variabilidade deste
tipo de frutos em distintas regiões do Brasil. Não se sabe como e quando se deu a
introdução de melões momordica no Brasil. Estas questões têm sido a motivação
para pesquisas realizadas conjuntamente entre o grupo brasileiro da Universidade
Federal Rural do Semi-Àrido e o grupo espanhol da Universidade Politécnica de
Valencia. As pesquisas preliminares com caracterizações morfológicas e
moleculares evidenciam grande variabilidade presente no germoplasma coletado
no Brasil. Uma próxima ação é comparar o germoplasma brasileiro e o indiano. A
hipótese inicial é que os frutos foram introduzidos por imigrantes europeus uma
vez que escravos, pelo menos a princípio, não cultivaram esse tipo de melão no
continente africano. Sabe-se que além da Índia, duas ilhas Japonesas (Hachijo e
Fukue) cultivaram melões momordica para servir de alimento nas duas guerras
mundiais (FUJISHITA, 2004).
A resistência observada nos acessos C-AC-02, C-AC-09, C-AC-15, C-AC34 a P. xanthii corrobora com um fato notório registrado na literatura internacional
sobre o potencial do germoplasma indiano como fontes de alelos de resistência a
muitos patógenos. Os híbridos modernos resistentes aos fungos P. xanthii e G.
cichoracearum, agentes causais de oídio, cultivados nos países desenvolvidos
como Estados Unidos, Israel, Espanha, Japão, França entre outros, possuem
background genético indiano, em especial momordica. Melões momordica também
são fontes de alelos de resistência a outros patógenos como os fungos
[Pseudoperonospora cubensis (Berk et Curtis) Rostovzer e Fusarium oxysporum
f.sp. melonis (Snyder et Hansen)], os vírus (zucchini yellow mosaic virus, papaya
68
ringspot virus entre outros) e insetos (Aphis gossypii Glover) (DHILLON et al.,
2012). As principais fontes de resistência são PI 124111, PI 124112, PI 414723, PI
134192 (PITRAT, 2008). Todos estes acessos são resistentes a maioria das raças de
P. xanthii. Esse é o primeiro relato da reação de resistência de acessos momordica
cultivados no Brasil a P. xanthii. É um resultado importante por tratar-se de
acessos cultivados na agricultura tradicional e adaptados às condições ambientais
brasileiras, sendo, portanto, fontes promissoras para o melhoramento visando
resistência à P. xanthii. Uma informação adicional que deve ser obtida em
trabalhos subsequentes é saber para quais raças os referidos acessos são resistentes.
O quinto acesso identificado como resistente (AM55-1A) pertence à
variedade botânica acidulus Naudin. A variedade acidulus é nativa dos trópicos
úmidos do Sul da Índia. Os frutos são monóicos, ovais ou elípticos, casca lisa de
coloração amarela brilhante e polpa extremamente rígida e de coloração branca ou
creme. Possuem baixo sólidos solúveis e ausência de aroma. São consumidos em
saladas e pratos típicos da Índia como o ‘Sambhar’, um ensopado vegetal com
tamarindo (Tamarindus indica L.) (FERGANY et al., 2011). As características
descritas para frutos acidulus foram observadas no acesso AM55-1A (Tabela 5; 6).
Este tipo de melão é consumido em salada no Norte/Nordeste brasileiro.
Diferentemente da variedade botânica momordica, não tem sido registradas
muitas fontes de resistência em acidulus. A explicação lógica é que somente
recentemente tem sido dado atenção ao germoplasma acidulus (FERGANY et al.,
2011; DHILLON et al., 2012). Como os trabalhos iniciaram-se no começo da
presente década ainda há muitas informações relevantes que estão sendo obtidas
com relação à resistência destes tipos de melão aos principais patógenos da cultura.
Não obstante, outra fonte importante de resistência a P. xanthii da variedade
acidulus foi identificada. Trata-se do acesso TG-1551, oriundo de Zimbábue no
Sudeste africano, com resistência às raças 1, 2Fr (francesa) e 5. O controle genético
da resistência as três raças é o mesmo, qual seja, dois genes independentes que
interagem em uma epistasia dominante-recessiva (YUSTE-LISBONA, 2010).
Outra fonte acidulus é o acesso PI 313970 resistente as raças 1, 2US e “S”
(McCREIGHT, 2003).
69
Além da caracterização morfológica realizou-se a caracterização molecular
para investigar a distância dos acessos resistentes em relação aos padrões de outras
variedades botânicas com o intuito de confirmar a classificação morfológica. O
conteúdo médio de informação polimórfica (PIC) observado foi 0,60 (Tabela 7).
Aragão et al. (2013) obtiveram uma estimativa PIC de 0,32 com acessos coletados
no Nordeste do Brasil e 17 marcadores microssatélites diferentes daqueles usados
no presente estudo. Dhillon et al. (2007; 2009) usando marcadores microssatélites
em germoplasma momordica e referências observaram valores de 0,54 e 0,64.
Fergany et al (2011) trabalhando com germoplasma acidulus e referências
constataram PIC de 0,70. O conteúdo médio de informação polimórfica (PIC) é um
parâmetro relacionado a diversidade e frequência alélica. Resultados diferentes
entre trabalhos são comuns em função do germoplasma e marcadores genéticos
utilizados.
As análises de agrupamento via UPGMA e análise fatorial de
correspondência foram eficientes para agrupar no mesmo grupo os acessos
resistentes C-AC-02, C-AC-09, C-AC-15, C-AC-34 com os padrões momordica PI
124111, PI 124112 e PI 414723. Da mesma forma, o acesso AM55-1A foi
agrupado no mesmo grupo do padrão acidulus TGR-1551 (Figuras 3, 4).
Os acessos momordica não foram agrupados no centro do gráfico gerado pela
análise fatorial de correspondência (Figura 4). Este resultado é distinto daquele
observado por Dhillon et al. (2007). Na ocasião, os referidos autores interpretaram
o resultado como uma confirmação da Índia como centro primário de diversidade e
o mediterrâneo e os países ao redor do Mar da China como extremos da
distribuição geográfica de C. melo. Conceito também suportado por Luan et al.
(2010) ao realizar análises com germoplasma Chinês.
A posição lateral dos acessos C-AC-02, C-AC-09, C-AC-15, C-AC-34 e as
referências no presente estudo é um resultado contraditório em relação ao que tem
sido reportado para melão momordica. Este resultado indica que os referidos
acessos têm pouca relevância na geração dos germoplasmas oriental e ocidental,
representando, portanto, uma diversidade genética ainda não explorada pelos
melhoristas. Todavia, apenas 7,28% dos alelos são exclusivos dos acessos
70
momordica. Para o acesso AM55-1A a posição lateral confirma os resultados
observados por Fergany et al. (2011), indicando que o referido acesso possui alelos
ainda não explorados. Contrapondo a essa hipótese está o fato do citado acesso não
ter nenhum alelo exclusivo. Ressalta-se que uma amostra composta por mais
acessos deve ser utilizada para a confirmação das hipóteses. Trabalho que tem sido
desenvolvido pela Universidade Federal Rural do Semi-Árido nos sete últimos
anos. Por outro lado, a técnica foi eficiente para localizar os acessos resistentes nas
respectivas variedades botânicas.
A identificação das fontes de resistência no germoplasma primário da cultura
é a primeira etapa na busca de cultivares resistentes. Para as cinco fontes de
resistência identificadas, o passo seguinte é identificar para quais raças os acessos
são resistentes. No Brasil, há registros das raças 0, 1, 2Fr (francesa), 3, 4 e 5
(REIS; BUSO, 2004; FAZZA, 2006). No caso da Espanha, local onde foi realizado
o trabalho, as raças presentes no Sudeste são 1, 2, 4 e 5 (DEL PINO et al., 2002) e
3.5 (TORES et al., 2009). Ensaios preliminares apontaram todos os acessos como
altamente resistentes a raça 5 (dados não apresentados).
Outro aspecto importante revelado na caracterização morfológica é a menor
qualidade dos frutos dos acessos resistentes. De um modo geral, os acessos
resistentes possuem maior prolificidade e menor qualidade de frutos, ou seja,
menor espessura da polpa e baixos valores de sólidos solúveis. Esse fato pode gerar
dificuldade, mas não impede a transferência de resistência para materiais
melhorados. A história tem mostrado que programas de retrocruzamentos com
germoplasma indiano têm sido efetivos para a geração de novas cultivares
resistentes a diferentes raças de P. xanthii (JAHN et al., 2002; PITRAT, 2008;
DHILLON et al., 2012).
Ressalta-se ainda que ações de pesquisa visando conhecer o controle genético
da resistência presente nos acessos devem ser executadas. As informações
advindas dos estudos de herança proporcionaram uma melhor orientação sobre a
estratégia que deve ser utilizada pelo melhorista para introgressão dos alelos de
resistência.
71
5 CONCLUSÕES
- Os acessos C-AC-02, C-AC-09, C-AC-15, C-AC-34 e AM55-1A são resistentes a
P. xanthii;
- As caracterizações morfológica e molecular confirmam que os acessos C-AC-02,
C-AC-09, C-AC-15, C-AC-34 são da variedade momordica, enquanto o acesso
AM55-1A da variedade acidulus.
72
REFERÊNCIAS
AGUIAR, B.M.; VIDA, J.B.; TESSMANN, D.J.; OLIVEIRA, R.R.; AGUIAR,
R.L.; ALVES, T.C.A. Fungal species that cause powdery mildew in greenhousegrown cucumber and melon in Paraná State, Brazil. Acta Scientiarum, v. 34, n. 3,
p. 247-252, 2012.
ARAGÃO, F.A.S.; TORRES FILHO, J.; NUNES, G.H.S.; QUEIRÓZ, M.A.;
BORDALLO, P.N.; BUSO, G.S.C.; FERREIRA, M.A.; COSTA, Z.P.; BEZERRA
NETO, F. Genetic divergence among accessions of melon from traditional
agriculture of the Brazilian Northeast. Genetics and Molecular Research, v.12, p.
6356-6371, 2013.
BARDIN, M.; DOGIMONT, C.; NICOT, P. PITRAT, M. Genetic analysis of
resistance of melon line PI 124112 to Sphaerotheca fuliginea and Erysiphe
cichoracearum studied in recombinant inbred lines. Acta Horticulture, v. 492, p.
163-168, 1999.
BURGER, Y.; PARIS, H.S.; COHEN, R.; KATZIR, N.; TADMOR, Y.; E.
LEWINSOHN, E.; SCHAFFER, A.A. Genetic diversity of Cucumis melo.
Horticulture Review. v. 36, p. 165–198, 2010.
CARMO FILHO, F.; OLIVEIRA, O.F. Mossoró: um município do semiárido nordestino – características e aspectos florísticos. Mossoró: FGD,
1989. (Coleção Mossoroense, Série B, n. 672).
CHIBA, N.; SUWABE, K.; NUNOME, T.; HIRAI, M. Development of
Microsatellite Markers in Melon (Cucumis melo L.) and Their Application
to Major Cucurbit Crops. Breeding Science, n. 53, p. 21-27, 2003.
73
COHEN, Y.; EYAL, H. Differential expression of resistance to powdery mildew
incited by race 1 or 2 of Sphaerotheca fuliginea in Cucumis melo genotypes at
various stages of plant development. Phytoparasitica, v. 23, p. 223-230, 1995.
COHEN, R. BURGER, Y.; KATZIR, N. Monitoring physiological races of
research and commerce. Phytoparasita. v. 32, p. 174-183, 2004.
COHEN, S.; COHEN, Y. Genetics and nature of resistance or race 2 of
Sphaerotheca fuliginea in Cucumis melo PI 124111. Phytopathology, v. 76, p.
1165-1167, 1986.
CRESTE, S.; TULMANN NETO, A.; SILVA, S. O.; FIGUEIRA, A.
Genetic characterization of banana cultivars (Musa spp.) from Brazil using
microsatellite markers. Euphytica, n. 132, p. 259-268, 2003.
CRUZ, C.D. Programa genes diversidade genética. Viçosa: Editora UFV,
2011, 278p.
DEL PINO, D.; OLALLA, L.; PEREZ-GARCIA, A.; RIVERA, M.E.; GARCIA,
S.; MORENO, R.; VICENTE, A.; TORÉS, J.A. Occurrence of Races and
Pathotypes of Cucurbit Powdery Mildew in Southeastern Spain. Phytoparasitica,
v. 30, n.5, p. 1-8, 2002.
DELGADO, G.; LEMUS, Y. Taxonomía de Sphaerotheca fuliginea (Erysiphales,
Ascomycota) sobre melón en Cuba. Fitosanidad, v. 8, n. 2, p. 27-29, 2004.
74
DELWING, A.B. O estado da arte das sementes crioulas no Rio Grande
do Sul com ênfase em sementes crioulas de melão (Cucumis melo L.).
2006. 125p. Dissertação (Mestrado em Fitotecnia) – Universidade Federal
do Rio Grande do Sul, Porto Alegre, 2006.
DELWING, A. B.; FRANKE, L.B.; BARROS, I.B.I. Qualidade de sementes de
acessos de melão crioulo (Cucumis melo L.). Revista Brasileira de Sementes,
Brasília, v. 29, n. 2, p. 187-194, 2007.
DHILLON, N. P. S.; RANJANA, R.; SINGH, K.; EDUARDO, I.; MONFORTE,
A.J.; PITRAT, M.; DHILON, N.L.; SINGH, P.P. Diversity among landraces of
Indian Snapmelon (Cucumis melo var. momordica). Genetics Resources Crop
Evolution, v. 54, n.6, p. 1267-1283, 2007.
DHILLON NPS; SINGH J; FERGANY M; MONFORTE AJ, SUREJA AK.
Phenotypic and molecular diversity among landraces of snapmelon
(Cucumis melo var. momordica) adapted to the hot and humid tropics of
eastern
India.
Plant
Genetic
Resources:
Characterization
and
Utilization, v. 7, p. 291-300, 2009.
DHILLON, N.P.S., MONFORTE, A.J., PITRAT, M. Melon landraces of India:
DOYLE, I.J.; DOYLE, J.L. Isolation of plant from fresh tissue. Focus, Rockville,
v.12, p.13-15, 1990.
EMBRAPA. Sistema brasileiro de classificação de solos. Brasília:
Embrapa, 1999. 412p.
75
Genetics, v. 126, n. 5, p. 1285-1303, 2013.
FAZZA, A. C. Caracterização e ocorrência de agentes causais de oídio em
cucurbitáceas no Brasil e reação de germoplasma de meloeiro. Piracicaba:
ESALQ, 2006. 60p. (Dissertação de Mestrado). 2006.
FERGANY, M.; KAUR, B.; MONFORTE, A. J.; PITRAT, M.; RYS, C.; LECOQ,
H.; DHILLON, N. P. S.; DHALIWAL, S. S. Variation in melon (Cucumis melo)
landrances adapted to the humid tropics of sourthern India. Genetic Resources
Crop Evolution, v. 58, p. 225-243, 2011.
FERREIRA, D.F. SISVAR: A Computer Statistical Analysis System.
Ciência e Agrotecnologia, Lavras, v. 35, n. 6, p. 1039-1042. 2011.
FUJISHITA, N. Pedigree of melon (Cucumis melo) in ancient Japan.
Internacional Symposium on Asian Plant Diversity and Systematics,
Sakura, Japan, July 29- August 1, 2004.
FURLANI, P.R. Hydroponic vegetable production in Brasil. Acta
Horticulturae, v. 481, p.777-778. 1999.
HOLLOMON, D.W.; WEELER, I.E. Controlling powdery mildews with
chemistry. In: The powdery mildews: a comprehensive treatise,
(BÉLANGER, R.R.; BUSHNELL, W.R.; DIK, A.J.; CARVER, T.L.W.,
eds), Ed. APS Press, St. Paul (MN, USA). 2002. pp 249-255. Saint Paul, MN:
APS Press. 2002.
76
HOSOYA, K.; KUZUYA, M.; MURAKAMI, T.; KATO, K.; NARISAWA, K.;
EZURA, H. Impact of resistant melon cultivars on Sphaerotheca fuliginea. Plant
Breeding, v. 119, p. 286-288, 2000.
HOSOYA, K.; NARISAWA, K.; PITRAT, M.; EZURA, H. Race identification in
powdery mildew (Sphaerotheca fuliginea) on melon (Cucumis melo) in Japan.
Plant Breeding, v. 118, p. 259-262, 1999.
IPGRI. Descriptors for melon (Cucumis melo L.). Rome: IPGRI. 2003.
65p.
JAGGER, I. C.; SCOTT, G. W. Development of powdery mildew resistant
cantaloupe No. 45. U.S. Department Agriculture Circular, v. 441, p. 1-5, 1937.
JAHN, M.; MUNGER, H.M.; McCREIGHT, J.D. Breeding Cucurbit Crops for
treatise, (BÉLANGER, R.R.; BUSHNELL, W.R.; DIK, A.J.; CARVER, T.L.W.,
eds), Ed. APS Press, St. Paul (MN, USA). 2002. pp 239-248.
KRISTKOVÁ, E.; LEBEDA, A.; SEDLTLKOVÁ, B. Virulence of Czech cucurbit
powdery mildew isolates on Cucumis melo genotypes MR-Iand P1124112.
Scientia Hoil, v. 99, p. 257-265, 2004.
KUZUYA, M.; YASHIRO, K.; TOMITA, K.; EZURA, H. Powdery mildew
(Podosphaera xanthii ) resistance in melon is categorized into two types based on
inhibition of the infection processes. Journal of Experimental Botany, v. 57, n. 9,
p. 2093-2100, 2006.
LEBEDA, A.; KRÍSTKOVÁ, E.; SEDLÁKOVÁ, B.; McCREIGHT, J.D.;
COFFEY, M.D. New concept for determination of pathotypes and races of cucurbit
powdery mildew. In: PITRAT M. (ed) Proceedings of the IXth EUCARPIA
77
meeting on genetics and breeding of Cucurbitaceae, INRA, Avignon, France,
pp. 125-134. 2008.
LIU, K.; MUSE, S. V. Powermaker: integrated analysis environment for genetic
marker data. Bioinformatics, v. 21, p. 2128-2129, 2005.
derived from parents of diverse geographic Origins. Euphytica, v. 173, n.1, p. 116, 2010.
MELOGEN. Development of genomics tools in melon. Available at
http://www.melogen.upv.es COMAV, Universitat Politecnica de Valencia,
Valencia, Spain. 2003. (Verificado em maio de 2012).
McCREIGHT, J.D. Genes for resistance to powdery mildew races 1 and 2U.S. in
melon PI 313970. HortScience, v. 38, n.4, p. 591-594, 2003.
McCREIGHT, J.D. Melon-powdery mildew interactions reveal variation in melon
cultigens and Podosphaera xanthii races 1 and 2. Journal of the American
Society Horticultural Science, v. 1331, p. 59-65, 2006.
v. 46, n. 6, p. 828-840, 2011.
McCREIGHT, J.D.; COFFEY, M.; SEDLAKOVA, B.; LEBEDA, A. Cucurbit
powdery of melon incited by Podosphaera xanthii: Global and western U.S.
perspectives. Cucurbitaceae 2012, Proceedings of the Xth EUCARPIA meeting
on genetics and breeding of Cucurbitaceae (eds. Sari, Solmaz and Aras) Antalya
(Turkey), October 15-18th, 2012.
78
NEITZKE, R.S.; BARBIERI, R.L.; HEIDEN, G.; BÜTTOW, M.V.;
OLIVEIRA, C.S.; CORRÊA, L.B.; SCHWENGBER, J.E.; CARVALHO,
F.I.F. Caracterização morfológica e dissimilaridade genética entre
variedades crioulas de melão. Horticultura Brasileira, v.27, n.3, p. 534538, 2009.
PAIVA, W.O. Divergência genética entre linhagens de melão e a heterose
de seus híbridos. Horticultura Brasileira, v.20, n.1, p. 34-37, 2002.
PERRIER, X.; FLORI, A.; BONNOT, F. Data analysis methods. In: HAMON, P.;
SEGUIN, M.; PERRIER, X.; GLASZMANN, J.C. Ed., Genetic diversity of
cultivated tropical plants. Enfield, Science Publishers. Montpellier. pp 43 – 76.
2003.
PITRAT, M. Melon. In: J. PROHENS and F. NUEZ (eds.), Handbook of
plant breeding. Springer, New York. 2008. p. 283-315.
REIS, A.; BUSO, J.A. Levantamento preliminar de raças de Sphaerotheca
fuliginea no Brasil. Horticultura Brasileira, v. 122, n.3, p. 628-631, 2004.
SAS INSTITUTE. SAS/STAT user's guide: version 9.2. 4th ed. Cary: SAS
Institute, 2005. v.2. 846p.
SALES JÚNIOR, R.; NUNES, G.H.S.; MICHEREFF, S.J.; PEREIRA, E.W.L.;
GUIMARÃES, I.M. Reaction of families and lines of melon to powdery mildew.
Horticultura Brasileira, v. 29, n. 3, p. 382-386, 2011.
79
SCOTT, A.; KNOTT, M. Cluster-analysis method for grouping means in
analysis of variance. Biometrics, Washington D.C., v.30, n.3, p.507-512,
1974.
TAMURA, K.; DUDLEY, J.; NEI, M.; KUMAR, S. Mega 4: molecular
evolutionary genetics analysis (MEGA) software Version 4.0. Molecular Biology
and Evolution, v. 24. p. 1596-1599, 2007.
THOMAS, C.E. Downy and powdery mildew resistant muskmelon breeding
line ‘MR-1’. HortScience, v. 21, p. 329, 1986.
TORÉS, J.A.; SÁNCHEZ-PULIDO, J.M.; LÓPEZ-RUIZ, F. First occurrence of
Cucurbit powdery mildew caused by race 3-5 of Podosphaera xanthii in Spain.
Plant Disease, v. 93, n. 10, p. 1073, 2009.
VIANA, F. M. P. Recomendações para o controle das principais doenças que
afetam a cultura do melão na região Nordeste. Fortaleza: Embrapa
Agroindústria Tropical, 2001. 6 p. (Embrapa Agroindústria Tropical. Circular
Técnica, 12).
80
CAPÍTULO 2
HERANÇA DA RESISTÊNCIA A Podosphaera xanthii EM ACESSOS DE
MELOEIRO
81
RESUMO
NUNES, Elaíne Welk Lopes Pereira. Herança da resistência a Podosphaera
xanthii em acessos de meloeiro. 2014. 125p. Tese (Doutorado em
Agronomia/Fitotecnia) – Universidade Federal Rural do Semi-Árido (UFERSA),
Mossoró-RN, 2014.
O oídio é uma doença severa que causa perdas significativas na produção de melão
em todo o mundo. A obtenção de cultivares resistentes é feita pela introgressão de
alelos no programa de melhoramento. Neste estudo, investigou-se a herança da
reistência AM55-1A e C-AC-15 em cruzamentos com a cultivar suscetível
‘Véndrantais’ que foi estudado em condições de estufas. As razões de segregações
de resistência/suscetibilidade observados nas diferentes populações (F1, F2, RC1 e
RC2) indicou herança monogênica e dominante em AM55-1A e dois genes
independentes com interação epistática duplo recessiva no controle genético em CAC-15.
Palavras-chaves: Cucumis melo. Oídio. Epistasia. Controle genético. Monogênica.
82
ABSTRACT
NUNES, Elaíne Welk Lopes Pereira. Inheritance of resistance to Podosphaera
xanthii in melon accessions. 2014. 125p. Thesis (Doctorate em Agronomy/Crop
Science) – Universidade Federal Rural do Semi-Árido (UFERSA), Mossoró-RN,
2014.
Powdery mildew is a severe disease that causes substantial losses in melon
production around the world. Obtaining resistant cultivars is done by
introgression of alleles in the breeding program. In this study, it was
investigated the inheritance of that AM55-1A and C-AC-15 in crosses with
susceptible cultivar ‘Véndrantais’ was studied under greenhouses conditions. The
segregations ratios for resistance/susceptibility observed in the different
populations (F1, F2, RC1 and RC2) indicated a monogenic and dominant inheritance
in AM55-1A and two independent genes with epispastic interaction double
recessive control resistance in C-AC-15.
Key Words: Cucumis melo. Powdery mildew. Epistasis. Genetic Control.
Monogenic.
83
1 INTRODUÇÃO
O oídio, causado pela espécie fúngica Podosphaera xanthii, é a principal
doença da parte aérea do meloeiro nos campos de produção do Nordeste brasileiro.
Este patógeno é um parasita biotrófico que geralmente cresce nas superfícies
foliares adaxial e abaxial, obtendo nutrientes dsa células epidérmicas por meio de
haustório (GREEN et al., 2002). As consequências mais severas da ação do
patógeno é a redução da área foliar e a queda prematura das folhas. Por
conseguinte, o fungo pode reduzir o rendimento da cultura, pela diminuição do
tamanho do fruto e do número de frutos. Em condições mais extremas o fungo
pode acarretar a morte da planta devido a intensa severidade (SITTERLY, 1978).
A aplicação de fungicidas a base de enxofre tem sido utilizada para o
controle da doença (McGRANTH, 2001), mas devido ao potencial de resistência
em razão da variabilidade patogênica, altos custos e potenciais danos ao meio
ambiente, e sobretudo, a pressão para redução da aplicação de produtos
fitossanitários por parte do mercado consumidor, a aplicação de produtos químicos
vem sendo reduzida. Em razão disso, o uso de cultivares resistentes tem sido
incentivado, pelas suas vantagens como fácil adoção pelo produtor, menor custo,
compatibilidade com outros métodos e menor riscos de contaminação ao homem e
meio ambiente.
O melhoramento genético para resistência a P. xanthii é um exemplo de
êxito em meloeiro (JAHN et al., 2002). Todo o processo tem início na identificação
de germoplasma com alelos que conferem resistência às raças prevalentes em
determinada região produtora. Nesse sentido, nas triagens realizadas têm sido
identificados vários acessos utilizados como fontes de resistência, em especial
aqueles provenientes de centros de diversidade da cultura, como a Índia
(DHILLON et al., 2012), península ibérica (FLORIS; ALVAREZ, 1996) e oriente
(Japão, Coréia e China) (McCREIGHT et al., 2013).
Para o aproveitamento das fontes de resistência identificadas nos
programas de melhoramento visando obter genótipos resistentes a P. xanthii, é
importante o conhecimento do controle genético envolvido na resistência. Esforços
84
têm sido realizado para elucidar a herança da resistência a P. xanthii em meloeiro.
Com efeito, muitos trabalhos foram publicados na (JAGGER et al., 1938;
HARWOOD; MARKARIAN, 1968; EPINAT et al., 1993; FLORIS; ALVAREZ,
1995; FUKINO et al., 2004; PITRAT; BESOMBLES, 2008; YUSTI-LISBONA et
al., 2010; McCREIGHT; COFFEY, 2011). Os resultados apresentados foram muito
divergentes quanto aos mecanismos de resistência devido a diversos fatores como
genitores, raças, métodos de avaliação e condições ambientais (COHEN et al.,
2004).
Embora existam muitos artigos que abordem o estudo de herança em
meloeiro a raças de P. xanthii, sempre que uma nova fonte de resistência é
identificada são imprescindíveis estudos de herança porque as informaçõe advindas
orientam sobre a melhor estratégia que deve ser utilizada pelo melhorista para
introgressão dos alelos de resistência. Além disso, não há relatos na literatura de
trabalhos sobre o controle genético de fontes de resistência cultivadas pelos
pequenos produtores brasileiros, como é o caso do acesso momordica C-AC-15.
Diantes dessas considerações, o presente trabalho teve como objetivo
estudar a herança da resistência genética nos acessos AM55-1A e C-AC-15 a P.
xanthii.
85
2.1 Local
O experimento foi conduzido no período de 16/02/2013 a 24/03/2013 na
casa de vegetação e Laboratórios de Melhoramento Genético de Cucurbitáceas do
Instituto de Conservación Y Mejora de La Agrodiversidad Valenciana (COMAV)
na Universidad Politénica de Valencia (UPV), em Valencia, Espanha. O município
de Valencia, na Comunidad Valenciana, está situado a uma latitude norte de 39°
28' 11’’, longitude 0° 22' 38’’ a oeste de Greenwich e tem 13,0 m de altitude acima
do nível do mar. Durante o período de execução do experimento, a temperatura
média na casa de vegetação foi de 12,3ºC e a umidade relativa do ar de 58,23%.
2.2 Germoplasma
A linhagem ‘Véndrantais’ foi utilizada como genitor suscetível nos
cruzamentos para estudo de herança da resistência com acessos resistentes AM551A e C-AC-15 (Figura 5). A referida linhagem pertencente à variedade botânica
cantaloupensis foi lançada pela Vilmorin Seed Company. É comumente cultivada
na França e possui frutos do Tipo Charanthais de forma arredondada (IF = 1,0),
mesocarpo de coloração salmão e elevado teor de sólidos solúveis (> 11ºBrix). O
acesso AM55-1A é de origem indiana e pertence à variedade botânica acidulus
Naudin (Figura 5). O acesso C-AC-15 foi coletado no Estado do Rio Grande do
Norte, no município de Mossoró-RN (Figura 5). Pertence à variedade botânica
momordica (Roxb.) Duthie et Fuller.
No ano de 2013, foram obtidas as seguintes populações: F1, F2, RC1 e RC2
dos dois cruzamentos realizados entre a linhagem ‘Véndrantais’ com cada um dos
acessos resistentes mencionados.
86
Figura 5. Frutos dos genitores utilizados nos estudos da herança para resistência a
P. xanthii. Valencia, UPV, 2014.
2.4 Manutenção do isolado
Foi utilizado o isolado de P. xanthii UP-PX-01 coletado em uma planta com
sintomas do terceiro retrocruzamento da população C-61’ (Tipo Pele de Sapo e
variedade inodorus) x C-30 (variedade makuwa) em casa de vegetação da
Universidad Politénica de Valencia.
O isolado foi mantido por inoculações periódicas com intervalos de 30 dias
em plantas da linhagem C-61’. A inoculação do patógeno foi realizada em
cotilédones e folhas de plantas no estágio de três folhas verdadeiras com o auxílio
de pincel com cerdas de camelo nº 2 previamente desinfestado em álcool 70%. As
plantas foram mantidas em casa de vegetação isolada e cultivadas em vasos
plásticos pretos com capacidade de 3 litros, preenchidos com substrato comercial
Huminsubstrat N3®.
A identificação da raça do isolado seguiu os mesmos procedimentos
adotados no Capítulo 1 do presente documento (Página 89).
2.4 Avaliação da reação nas populações
As avaliações foram feitas em casa de vegetação nas plantas das populações
cultivadas em vasos de 1 litro de com por substrato comercial, conforme descrito
no capítulo 1 (subitem 2.1.4). A inoculação e a avaliação foram feitas conforme a
87
metodologia empregada por Yuste-Lisbona et al. (2010). O isolado foi inoculado
na terceira folha verdadeira em dois pontos equidistantes da nervura foliar central.
A inoculação foi feita 25 dias após a semeadura. A avaliação se deu aos 15 dias
após a inoculação realizada utilizando a escala de notas de 1 a 4 e os critérios de
classificação de resistência/susceptibilidade definidos por Yuste-Lisbona (2010).
A escala de notas utilizada para a avaliação da reação das populações a P.
xanthii foi seguinte conforme Yuste-Lisbona (2010): 1: Sem esporulação; 2: Baixo
nível de esporulação; 3: Moderado nível de esporulação e 4: Esporulação profusa.
2.5 Análises estatísticas
As análises foram feitas classificando as plantas da população segregante em
resistentes (notas 1 e 2) e suscetíveis (notas 3 e 4). Adotou-se o teste de Quiquadrado para testar modelos genéticos visando explicar a herança da resistência
usando um erro nominal de 5% (α = 0,05). As análises foram processadas no
programa SAS Versão 9.2® (SAS INSTITUTE, 2005).
88
3 RESULTADOS
3.1 Identificação de raça
Um primeiro aspecto muito importante é a identificação da raça nos estudos
de herança. Nesse sentido foram inoculadas diferenciadoras de meloeiro utilizando
a metodologia de Yuste-Lisbona (2010). Os resultados observados no capítulo 1
foram confirmados com seis isolados, ou seja, a raça não foi definida em função da
inesperada
susceptibilidade
da
diferenciadora
‘MR-1’
(Tabela
8).
A
suscetibilidade do acesso PI 124111 era esperado uma vez que a diferenciadora
‘MR-1’ foi originado do mesmo. A diferenciadora Edisto 47 foi resistente assim
como o seu genitor, o acesso PI 124112.
Tabela 8. Reação de diferenciadoras de meloeiro a isolados de P. xanthii coletados
em casa de vegetação em Valencia. Valencia, UPV, 2014.
Diferenciadoras
‘Véndrantais’
‘PMR 45’
‘PMR 5’
‘PMR 6’
WMR 29
Edisto 47
PI 414723
HBJ
MR1
PI 124111
PI 124112
1
S
S
R
R
S
R
R
S
S
S
R
2
S
S
R
R
S
R
R
S
S
S
R
3
S
S
R
R
S
R
R
S
S
S
R
Isolados
4
S
S
R
R
S
R
R
S
S
S
R
5
S
S
R
R
S
R
R
S
S
S
R
6
S
S
R
R
S
R
R
S
S
S
R
R: resistente; S: suscetível.
3.2 Cruzamento AM55-1A x ‘Véndrantais’
Todas as plantas do genitor ‘Véndrantais’ foram suscetíveis ao fungo P.
xanthii. Foi observado ainda que todas as plantas do genitor AM55-1A foram
resistentes, assim como todas as plantas da geração F1 foram resistentes ao fungo
(Tabela 9).
89
Tabela 9. Frequência absoluta e teste de Qui-quadrado avaliado em populações
derivado do cruzamento entre AM55-1A e ‘Véndrantais’. Valencia, UPV, 2014.
População
AM55-1A (AM)
Frequência absoluta
Resistente Suscetível
15
0
Razão
χ2
Prob
(1:0)
‘Véndrantais’ (VEN)
0
15
(0:1)
F1
15
0
(1:0)
F2
61
25
(3:1)
0,76
0,383
RC1 (F1 x VEN)
64
54
(1:1)
0,85
0,357
RC2 (F1 x AM)
44
0
(1:0)
Na geração F2 foram observadas 61 plantas resistentes e 25 plantas
suscetíveis, enquanto que no retrocruzamento da geração F1 com o genitor
suscetível verificou-se 64 plantas resistentes e 54 suscetíveis (Tabela 9). Todas as
plantas do retrocruzamento entre F1 e o genitor resistente foram resistentes.
A partir dessas frequências observadas foi proposto um modelo para
explicar o controle genético da resistência verificada no acesso AM55-1A. O
modelo preconiza uma herança simples, explicada por um gene composto por dois
alelos, sendo que o alelo que confere a resistência é dominante sobre o alelo que
confere suscetibilidade. No referido modelo as proporções fenotípicas esperadas na
geração F2 são três plantas resistentes para uma planta suscetível (3:1). Esse
modelo foi testado utilizando o teste de Qui-quadrado a partir dos desvios entre as
frequências observadas e esperadas na população F2. Os desvios observados entre
as referidas frequências foram não significativos pelo teste de Qui-quadrado (χ2F2 =
0,76; p = 0,383).
O modelo também foi testado no retrocruzamento entre F1 e o genitor
suscetível ‘Véndrantais’. Nesta população a frequência esperada é de uma planta
resistente e uma planta suscetível (1:1). Novamente, constataram-se que os desvios
entre as frequências esperadas e observadas dos fenótipos são não significativos
pelo teste Qui-quadrado (χ2RC1 = 0,85; p = 0,357).
90
3.3 Cruzamento C-AC-15 x ‘Véndrantais’
Todas as plantas do genitor ‘Véndrantais’ foram suscetíveis ao fungo P.
xanthii. Observou-se que todas as plantas do genitor C-AC-15 foram resistentes,
assim como todas as plantas da geração F1 foram resistentes ao fungo (Tabela 10).
Tabela 10. Frequência absoluta e teste de Qui-quadrado avaliado em um
retrocruzamento derivado do cruzamento entre C-AC-15 e ‘Véndrantais’.
Valencia, UPV, 2014.
População
Frequência absoluta
Razão
χ2
Prob
Resistente
Suscetível
C-AC-15 (AC)
7
0
(1:0)
‘Véndrantais’ (VEN)
0
8
(0:1)
F1
10
0
(1:0)
F2
65
43
(9:7)
0,69
0,406
RC1 (F1 x VEN)
21
30
(1:3)
7,11
0,008
RC2 (F1 x AC)
45
0
(1:0)
Na geração F2 foram observadas 65 plantas resistentes e 43 plantas
suscetíveis, enquanto que no retrocruzamento da geração F1 com o genitor
suscetível verificou-se 21 plantas resistentes e 30 suscetíveis (Tabela 10). Todas as
plantas do retrocruzamento entre F1 e o genitor resistente foram resistentes.
As frequências observadas em F2 e em RC1 permitiram a proposição de um
modelo para explicar o controle genético da resistência no acesso C-AC-15. O
modelo genético prevê uma epistasia denominada dupla recessiva com a proporção
nove plantas resistentes e sete plantas suscetíveis (9:7) em F2. Na geração RC1 são
esperadas uma planta resistente e uma planta suscetível (1:3).
O modelo foi verificado na geração F2 uma vez que o valor de Quiquadrado foi não significativo (χ2RC1 = 0,69; p = 0,406). Entretanto, na geração RC1
o Qui-quadado foi significativo indicando que os desvios não são devidos ao acaso
(χ2F2 = 7,11; p = 0,008).
91
4 DISCUSSÃO
Não foi possível, novamente, identificar a(s) raça(s) presente(s) na casa de
vegetação na qual foram realizados os estudos de herança. A suscetibilidade
apresentada da linhagem ‘MR-1’ foi a razão pela qual a raça 4 não foi assinalada
como a identificada. São poucos os relatos sobre a suscetibilidade da linhagem
‘MR-1’ a isolados de P. xanthii (KŘÍSTKOVÁ et al., 2004; McCREIGHT;
COFFEY, 2011). No presente trabalho, o uso de isolado não monospórico pode ter
sido um fator limitante para a identificação de uma nova raça, uma vez que o
isolado utilizado foi proveniente de uma colônia inicial de uma lesão simples.
Todavia, para atenuar esse fato, Jahn et al. (2002) relatam que isolados coletados
no campo ou casa de vegetação, oriundos de uma única lesão podem ser
considerados geneticamente homogêneos. O isolado utilizado para a produção de
inóculo do presente trabalho tem as características relatadas por Jahn et al. (2002).
No estudo da herança da resistência do acesso AM55-1A contatou-se o
contraste entre os dois genitores utilizados quanto à reação ao fungo P. xanthii
(Tabela 9). Para a linhagem ‘Véndrantais’ foi registrada na literatura a sua
suscetibilidade às raças 1, 2US, 2Fr, 3, 4 e 5 (JAHN et al., 2002), enquanto a
resistência do AM55-1A confirma os resultados verificados no ensaio para
identificar fontes de resistências no primeiro Capítulo (Tabela 4).
A herança da resistência do acesso AM55-1A foi explicada por um modelo
com um gene composto por dois alelos (A e a), sendo que o alelo que confere a
resistência (A) possui dominância completa sobre o alelo que confere
suscetibilidade (a). Assim sendo, o genótipo do genitor suscetível ‘Véndrantais’
pode ser descrito por aa, enquanto o genótipo do acesso resistente é AA. Todas as
plantas resistentes na geração F1 têm o genótipo Aa. Na geração F2 os genótipos
das plantas resistentes podem ser AA ou Aa totalizando uma proporção fenotípica
de ¾ enquanto o genótipo de plantas suscetíveis é aa com uma proporção de ¼. No
retrocruzamento RC1 o genótipo das plantas resistentes é Aa, enquanto que em
plantas suscetíveis é aa.
92
Os resultados não significativos dos testes de Qui-quadrado confirmaram o
modelo proposto para explicar as proporções das classes fenotípicas nas gerações
F2 e RC1 (Tabela 9). Em outras palavras, os desvios entre as frequências esperadas
e observadas são meramente devido ao acaso. A dominância do alelo que confere a
resistência no acesso sobre o alelo que confere a suscetibilidade pode ser
confirmada ao se observar que a geração filial F1 apresentou todas as plantas como
resistentes, indicando dominância completa do alelo presente no acesso AM55-1A
que confere resistência a P. xanthii.
Muitos estudos de herança foram realizados com várias fontes de resistência
(JAGGER et al., 1938; BOHN; WHITAKER, 1964; HARWOOD; MARKARIAN,
1968; COHEN; COHEN, 1986; EPINAT et al., 1993; FLORIS; ALVAREZ, 1995;
BARDIN et al., 1999; FUKINO et al., 2004; PITRAT; BESOMBLES, 2008;
YUSTI-LISBONA et al., 2010; McCREIGHT; COFFEY, 2011). Os resultados
conforme se esperaria são discrepantes em função da variabilidade dos genitores,
variabilidade do patógeno (raças fisiológicas), métodos empregados e variações
ambientais. Dois destes estudos são mais relevantes para o presente trabalho pelo
fato das duas fontes de resistência, assim como o acesso AM55-1A, pertencerem à
variedade botânica acidulus (YUSTI-LISBONA et al., 2010; McCREIGHT;
COFFEY, 2011).
No primeiro estudo, o acesso TGR 1551, coletado em Zimbábue no Sudeste
africano, tem resistência às raças 1, 2 e 5. A herança da resistência do referido
acesso às três raças é determinada por dois locos que interagem em uma epistasia
recessivo-dominante. Foi o primeiro relato da presença desse tipo de herança em
meloeiro (YUSTE-LISBONA, 2010). O acesso PI 313970 possui resistência a raça
“S” condicionada por um alelo recessivo denominado pm-S (McCREIGHT;
COFFEY, 2011). Também possui resistência às raças 1 e 2US, conferida também
por alelos recessivos (McCREIGHT, 2003).
Uma possível relação da resistência apresentada pelo acesso AM55-1A com
as resistências de TGR-1551 e PI 313970 deverá ser tema de outros estudos por
meio de teste de alelismo. Não obstante, deve ser determinada para quais raças o
93
acesso AM55-1A é resistente. Estudos preliminares têm evidenciado resistência
deste acesso à raça 5 (dados não apresentados).
A resistência do acesso C-AC-15 é mais complexa por se tratar de uma
epistasia do tipo dupla recessiva. Assim sendo, estão envolvidos dois genes (A e B)
com dois alelos (A e a no gene A; B e b no gene B) com relação de dominância
completa. A resistência ocorre quando pelo menos um dos alelos dominantes estão
presentes em cada loco (A_B_). Nos demais genótipos, a ausência de alelos
dominantes em um ou nos dois locos condiciona a suscetibilidade. Com base no
presente modelo os genótipos dos genitores que explicam as frequências
observadas em todas as gerações são: AABB no acesso C-AC-15 e aabb na
linhagem suscetível ‘Véndrantais’. O genótipo das plantas resistentes em F1 seria
AaBb. Por conseguinte na geração F2 os genótipos das plantas resistentes seriam
(AABB, AABb, AaBB e AaBb), generalizando A_B_; e as plantas suscetíveis teriam
os seguintes genótipos aaBB, aaBb, generalizando (aaB_); AAbb, Aabb,
generalizando (A_bb) e aabb.
Do ponto de vista bioquímico, a resistência por epistasia dupla recessiva
ocorre quando duas enzimas são produzidas pelo indivíduo. Cada uma das enzimas
é produzida pelos alelos dominantes dos dois locos envolvidos no controle
genético do caráter. Por conseguinte, na ausência de uma das enzimas o indivíduo
é suscetível (RAMALHO et al., 2012).
O modelo foi comprovado na geração F2, mas não foi na geração RC1
(Tabela 10). Uma provável explicação foi o tamanho reduzido na amostra da
geração RC1 uma vez que o número de plantas suscetíveis foi superior em 9,0
indivíduos. Ressalta-se que algumas plantas da referida geração morreram. Outro
fato que reforça o modelo é que na geração RC2 não foram observadas plantas
suscetíveis. Os genótipos das plantas desta geração são os seguintes AABB, AABb,
AaBB e AaBb. Portanto, todos genótipos que condicionam plantas resistentes.
Em germoplasma momordica, como é o caso do acesso C-AC-15, a herança
da resistência geralmente é mais simples envolvendo um ou dois genes
(McCREIGHT, 1987). Esse é o primeiro relato da presença de epistasia do tipo
dupla recessiva no controle genético da resistência a P. xanthii em meloeiro.
94
Controle genético envolvendo modelo epistático recessivo-dominante foi
observado por Yuste-Lisbona et al. (2010) no acesso TGR 1551. Resende et al.
(1999) observou epistasia dupla recessiva na herança da resistência em dois
cruzamentos de feijoeiro comum em condições de campo.
A resistência presente nos acessos AM55-1A e C-AC-15 poderá ser
transferível para outros genótipos que sejam produtivos e possuam excelentes
qualidades de fruto. Deve ser considerado que os acessos resistentes não possuem
frutos com qualidades comerciais em especial sólidos solúveis (< 9,0 ºBrix)
(Tabelas 5 e 6; Capítulo 1). Em razão da simplicidade envolvida na herança da
resistência nos dois acessos, é possível executar algumas gerações de
retrocruzamentos para obter materiais resistentes e com boas características de
fruto. Foi por meio desse processo que a primeira cultivar resistente à raça 1 de P.
xanthii, Powdery Mildew Resistent (‘PMR 45’) foi obtida por melhoristas
americanos, no final da década de trinta (JAGGER et al., 1938). É também por esse
método que as cultivares modernas resistentes a diversas raças têm sido obtidas.
95
5 CONCLUSÕES
- A herança da resistência do acesso AM55-1A é controlada por apenas um gene
composto por dois alelos, sendo que o alelo que confere resistência domina o alelo
para suscetibilidade;
- Dois genes compostos por dois alelos com interação de dominância completa e
interação gênica (epistasia) do tipo duplo recessiva que controlam a herança da
resistência do acesso C-AC-15.
96
REFERÊNCIAS
BARDIN, M.; DOGIMONT, C.; NICOT, P. PITRAT, M. Genetic analysis of
resistance of melon line PI 124112 to Sphaerotheca fuliginea and Erysiphe
cichoracearum studied in recombinant inbred lines. Acta Horticulture, v. 492, p.
163-168, 1999.
BOHN, G.W.; WHITAKER, T.W. Genetics of resistance to powdery
mildew race 2 in muskmelon. Phytopathology, v. 54, n.4, p. 587-591,
1964.
COHEN, S.; COHEN, Y. Genetics and nature of resistance or race 2 of
Sphaerotheca fuliginea in Cucumis melo PI 124111. Phytopathology 76, 11651167, 1986.
COHEN, R.; BURGER, Y.; KATZIR, N. Monitoring physiological races of
research and commerce. Phytoparasitica, v. 32, n.1, p. 174-183, 2004.
DHILLON, N.P.S.; MONFORTE, A.J.; PITRAT, M. Melon landraces of India:
EPINAT, C.; PITRAT, M.; BERTRAND, F. Genetic analysis of resistance of five
melon lines to powdery mildews. Euphytica, v. 65, p. 135-144, 1993.
FLORIS, E.; ALVAREZ, J.M. Nature of resistance of seven melon lines to
Sphaerotheca fuliginea. Plant Pathology, v. 45, p.155-160, 1996.
FLORIS, E.; ALVAREZ, J.M. Genetic analysis of resistance of three melon lines
to Sphaerotheca fuliginea. Euphytica, v. 81, p. 181-186, 1995.
97
FUKINO, N.; KUNIHISA, M.; MATSUMOTO, S. Characterization of
recombinant inbred lines derived from crosses in melon (Cucumis melo L.),
‘PMAR 5’ x ‘Harukei No. 3’. Breeding Science, v. 5, p.141–145, 2004.
GREEN, J.R.; CARVER, T.L.W.; GURR, S.J. The formation and function of
infection feeding structures. In: The Powdery Mildews. A Comprehensive
Treatise (BÉLANGER, R.R., BUSHNELL, W.R., DIK, A.J. AND CARVER,
T.L.W., eds), Saint Paul, MN: APS Press, p. 66–82, 2002.
HARWOOD, R. R.; MARKARIAN, D. The inheritance of resistance to powdery
mildew in the cantaloupe variety Seminole. The Journal of Heredity, v. 59, n.2,
p. 126-130, 1968.
JAGGER, I.C.; WHITAKER, T.W.; PORTER, C.R. A new biologic form of
powdery mildew on muskmrlons in the Imperial Valley of California. Plant
Disease Reporter, v. 22, n. 2, p. 275-276, 1938.
JAHN, M.; MUNGER, H.M.; McCREIGHT, J.D. Breeding Cucurbit Crops fou
treatise, (BÉLANGER, R.R.; BUSHNELL, W.R.; DIK, A.J.; CARVER, T.L.W.,
eds), Ed. APS Press, St. Paul (MN, USA). p 239-248, 2002.
KRISTKOVÁ, E.; LEBEDA, A.; SEDLTLKOVÁ, B. Virulence of Czech cucurbit
powdery mildew isolates on Cucumis melo genotypes MR-I and P1124112.
Scientia Hoil, v. 99, p.257-265, 2004.
v. 46, n. 6, p. 828-840, 2011.
98
McCREIGHT, J.D.; PITRAT, M.; THOMAS, C.E.; KISHABA, A.N.; BOHN,
G.W. Powdery mildew resistance genes in muskmelon. Journal American
Society Horticulture Science, v.112, p. 156-160, 1987.
McCREIGHT, J. D. Genes for resistance to powdery mildew races 1 and 2U.S. in
melon PI 313970. HortScience, v. 38, n.4, p. 591-594, 2003.
McCREIGHT, J.D.; STAUB, J.E.; WEHNER, T.C.; DHILLON, N.P.S. Gone
global: familiar and exotic Cucurbits have Asian origins. HortScience, v. 48, n. 9,
p. 1078- 1089, 2013.
McGRANTH, M.T. Fungicide resistance in cucurbit powdery mildew: Experiences
and challenges. Plant Disease, v. 85, n. 1, p. 236-245, 2001.
PITRAT, M.; BESOMBLES, D. Inheritance of Podosphaera xanthii resistance in
melon line ‘90625’ In Cucurbitaceae 2008, IXth EUCARPIA Meeting on
Genetics and Breeding of Cucurbitaceae (Pitrat M, eds), INRA, Avignon,
France, p. 135-142, 2008.
RAMALHO, M.A.P.; SANTOS, J. B.; PINTO, C.A.B.; SOUZA, E.A.;
GONÇALVES, F. M. A.; SOUZA, J.C. Genética na agropecuária. 5 ed. UFLA,
Lavras, p.566, 2012.
REZENDE, V.F.; RAMALHO, M.A.P.; CORTE, H.R. Genetic control of
common bean (Phaseolus vulgaris) resistance to powdery mildew (Erysiphe
polygoni). Genetic Molecular Biology, v. 22, n.2, p. 233-236, 1999.
SAS INSTITUTE. SAS/STAT user's guide: version 9.2. 4th ed. Cary: SAS
Institute, 2005. v.2. 846p.
99
SITTERLY, W.R. Powdery mildews of cucurbits. In: SPENCER, D.M., ed. The
powdery mildews. NY: Academic Press, p.359- 379, 1978.
100
CAPÍTULO 3
IDENTIFICAÇÃO DE MARCADORES SNP ASSOCIADOS À RESISTÊNCIA A
Podosphaera xanthii EM MELOEIRO
101
RESUMO
NUNES, Elaíne Welk Lopes Pereira. Identificação de marcadores SNP
associados à resistência a Podosphaera xanthii em meloeiro. 2014. 125p. Tese
(Doutorado em Agronomia/Fitotecnia) – Universidade Federal Rural do SemiÁrido (UFERSA), Mossoró-RN, 2014.
O oídio em meloeiro é um problema fitopatogênico para a produção em
muitas áreas do mundo. A seleção fenotípica para resistência ao oídio é
difícil, trabalhoso e de baixa eficiência. O melhoramento para resistência ao
oídio pode ser assistido por marcadores moleculares (MAS). O objetivo
deste estudo foi identificar marcadores SNP associados à resistência em
acessos de AM55-1A e C-AC-15. A população de retrocruzamento (RC1)
derivado de AM55-1A x 'Véndrantais' e a população F2 de C-AC-15 x
'Véndrantais' foram utilizados para identificar QTLs associados à resistência
a P. xanthii usando análise de segregação de bulk com 243 SNP
marcadores moleculares. Dois QTLs (PM-AM55-1A_1 e Pm-A55-1A_2)
foram identificados no grupo de ligação V de AM55-1A x 'Véndrantais'.
Um QTL (Pm-C-AC-15_5) no grupo de ligação V e outros (Pm-C-AC15_9) no grupo de ligação IX.
Palavras-chaves: Cucumis melo. Oídio. QTL. Mapa genético. Genômica.
Resistência.
102
ABSTRACT
NUNES, Elaíne Welk Lopes Pereira. Identification of SNP markers associated
to resistance to Podosphaera xanthii in melon. 2014. 125p. Thesis (Doctorate
em Agronomy/Crop Science) – Universidade Federal Rural do Semi-Árido
(UFERSA), Mossoró-RN, 2014.
Powdery mildew in melon is a phytopathogenic problem for production in
many areas of the word. Phenotypic selection for powdery mildew
resistance is difficult, laborious and low efficiency. Powdery mildew
resistance breeding can be assisted by marker-assisted selection (MAS). The
objective of this study was identify SNP markers associated to resistance in
accessions AM55-1A and C-AC-15. The backcross population (BC1)
derived from AM55-1A x ‘Véndrantais’ and F2 population from C-AC-15 x
‘Véndrantais’ were utilized to identify QTLs associated to resistance to P.
xanthii using bulked segregation analysis with 243 SNP molecular markers.
Two QTLs (Pm-AM55-1A_1 and Pm-A55-1A_2) were identified on ligation
group V from AM55-1A x ‘Véndrantais’. One QTL (Pm-C-AC-15_5) on
ligation group V and other (Pm-C-AC-15_9) on ligation group IX.
Key Words: Cucumis melo. Powdery mildew. QTL. Genetic map. Genomic.
Resistance.
103
1 INTRODUÇÃO
O meloeiro é uma cultura de grande valor econômico em regiões tropicais
e temperadas. É cultivado em praticamente todo o território brasileiro, porém tem
grande relevância na Região Nordeste, que responde por mais de 95% da produção
nacional (BUENO; BACCARINN, 2012). Entre os principais fatores limitantes da
cultura estão às doenças ocasionadas por patógenos de natureza diversa. Dentre
esses patógenos, está o fungo Podosphaera xanthii, principal agente causal do
oídio em todo o mundo (LEBEDA et al., 2011).
O oídio aparece em folhas, pecíolos e gemas jovens de cucurbitáceas,
como um pó branco pulverulento composto por micélio denso e esporos. Em
condições favoráveis ao desenvolvimento do fungo toda a superfície da folha pode
ser coberta pelas suas estruturas. O fungo pode chegar a cobrir ambas as faces da
folha e provocar desfolhação prematura nas plantas, reduzindo a produção e
qualidade dos frutos (SITTERLY, 1978).
Em razão das suas vantagens como economicidade, facilidade de uso pelos
produtores e segurança ambiental, o uso de cultivares resistente tem sido
incentivado para o controle do oídio. A obtenção de cultivares resistentes é um dos
principais objetivos dos melhoristas em todo o mundo (McCREIGHT, 2006). Nos
programas de melhoramento a seleção para resistência é tradicionalmente feita com
base no fenótipo. Todavia, esse processo tem eficiência reduzida devido a vários
fatores como variabilidade do patógeno, método de inoculação e condições
ambientais (COHEN et al., 2004; LIU et al., 2010). Entretanto, existem
dificuldades e custos adicionais relacionadas à conservação dos vários isolados do
fungo. Por outro lado, com o advento de técnicas biotecnológicas, os pesquisadores
têm concentrado esforços em identificar marcadores moleculares de DNA
estreitamente ligados a genes de resistência a P. xanthii. O intuito é reduzir ou
eliminar as limitações da seleção fenotípica, reduzir custos e tornar o processo de
seleção mais eficiente. O desenvolvimento de marcadores moleculares
estreitamente ligados a genes de resistência a P. xanthii é a etapa fundamental para
104
a seleção assistida por marcadores (SAM) e clonagem de genes com base no
mapeamento genético.
Em razão disso, trabalhos para identificar marcadores moleculares ligados
a genes de resistência a P. xanthii foram feitos com diversos tipos de marcadores
como RAPD, AFLP, SCAR, SSR, SRAP e SNPs. Dessa forma, foram publicados
manuscritos que relatam a identificação de QTLs ligados a genes de resistência à
determinadas raças de P. xanthii. Os QTLs Pm-W da linhagem WMR-29
(PITRAT, 1991), Pm-NA (WANG et al., 2011), Pmv.1 da diferenciadora PI
124112 (PERCHEPIED et al. (2005) VÊ NORMAS e Pm-R do acesso TGR-1551
(YUSTE-LISBONA et al., 2011a) foram identificados no grupo de ligação V. Os
QTLs Pm-y do acesso VA 435 (PITRAT, 1991; PERIN et al., 2002), PmXII.1
(PERCHEPIED et al., 2005) e um QTL relatado por Fukino et al. (2008) estão
associados ao grupo de ligação XI. O QTL Pm-x (PITRAT, 1991; PERIN et al.,
2002) e um segundo QTL (FUKINO et al., 2008) estão associados com o grupo de
ligação II. No Brasil, foi identificado o marcador Pm-1 da linhagem AF-125 (Pm1) associado ao LG IX (TEIXEIRA et al., 2008). Todos os trabalhos apresentados
anteriormente não alcançaram seu objetivo principal que é identificar marcadores
estreitamente ligados (< 1 cM) a genes de resistência. Entretanto, Zhang et al.
(2012) identificaram o marcador CAPS-Dde I estreitamente ligado ao gene Pm-2F,
responsável pela resistência da linha chinesa K7-1 à raça 2Fr. Os referidos autores
relataram que o marcador desenvolvido pode ser usado como marcador universal
para seleção assistida.
Diante destas considerações, considerando a hipótese de que existem
marcadores moleculares do tipo SNP associados a genes de resistência a P. xanthii
presentes nos acessos AM55-1A e C-AC-15, o objetivo do presente trabalho foi
identificar marcadores moleculares SNP associados a genes de resistência a P.
xanthii dos acessos AM55-1A e C-AC-15.
105
2.1 Local
Os experimentos foram conduzidos na casa de vegetação e Laboratórios de
Melhoramento Genético de Cucurbitáceas do Instituto de Conservación Y Mejora
de La Agrodiversidad Valenciana (COMAV) na Universidad Politécnica de
Valencia (UPV), em Valencia, Espanha. O município de Valencia, na Comunidad
Valenciana, está situado a uma latitude norte de 39° 28' 11’’, longitude 0° 22' 38’’
a oeste de Greenwich e tem 13,0 m de altitude acima do nível do mar. Durante o
período de execução do experimento, a temperatura média na casa de vegetação foi
de 12,3ºC e a umidade relativa do ar de 58,23%.
2.2 Germoplasma
Os genitores utilizados para geração das populações segregantes de
mapeamento foram a linhagem suscetível ‘Véndrantais’ e os acessos AM55-1A e
C-AC-15 (Figura 5). A descrição completa dos citados genitores está no item 2.2
do Capitulo 2.
A população de mapeamento do cruzamento AM55-1A x ‘Véndrantais’ foi
o retrocruzamento RC1 (F1 x ‘Véndrantais’) com 118 plantas, enquanto que para o
cruzamento C-AC-15 x ‘Véndrantais’ utilizou-se a geração F2 com 108 plantas.
2.3 Obtenção, manutenção, inoculação do isolado e avaliação da reação nas
populações
A manutenção do isolado e a avaliação da reação da população de
retrocruzamentos RC1 foram os mesmos descritos no item 2.1. e 2.1.3 do Capítulo
1.
106
2.4 Extração de DNA
A extração do DNA das plantas seguiu o protocolo descrito no item 2.3.3 do
Capítulo 1.
2.5 Marcadores SNP e Análise de QTLs
Foi utilizada a metodologia Bulk Segregant Analysis (BSA) desenvolvida por
Michelmore et al. (1991). Para isso foram criados dois bulks de DNA de 20 plantas
avaliadas para a reação a P. xanthii na população RC1. O primeiro bulk foi
composto de DNA das plantas classificadas como resistentes, enquanto o segundo,
por DNA de plantas avaliadas como suscetíveis.
Foram utilizados 243 marcadores SNPs identificados e descritos em detalhes
por Esteras et al. (2013). A genotipagem com a plataforma GoldenGate foi
conduzida no Centro Nacional de Genotipado Espanhol (CE-GEN-ISCIII)
(http://www.cegen.org). A sequência de cada locus selecionado, incluindo o
nucleotídeo polimórfico flanqueados por sequências de 60 pb foi submetida ao
Illumina (Illumina Assay Design Tool (ADT). A Genotipagem GoldenGate foi
realizada conforme descrita por Blanca et al. (2012). O ensaio GoldenGate foi
desenvolvido na plataforma BeadXpress R usando a tecnologia Veracode R
(Illumina). Os produtos de PCR, denominados Cy3 e Cy5 dependendo do alelo
foram hibridizados a um vidro Veracode. Cada SNP foi identificado pelo
Illumicode e os alelos foram discriminados pela sua fluorescência em um leitor
Veracode BeadXpress (BLANCA et al., 2012).
2.6 Análises estatísticas
A análise de QTLs ligados à resistência de meloeiro a P. xanthii foi realizada
utilizando o método de mapeamento por intervalo composto, conforme o programa
MapQTL®. Na metodologia por Intervalo composto, um marcador estritamente
107
ligado a um QTL potencial é selecionado utilizando um procedimento de seleção
de cofatores com um ponto de corte de 2% de probabilidade (p ≤ 0,02). Utilizando
o grupo de cofatores selecionados, a análise de Mapeamento por intervalo
composto) é conduzida. Teste de permutações de 10.000 ciclos foi realizado para
estimar o LOD (Log of Odds-ratio) relativo à presença de determinado QTL em
uma região genômica (VAN OOIJEN, 2004).
O mapa de ligação foi realizado utilizando o programa Windows QTL
Cartographer® 2.5 (WANG et al., 2007). A função de Kosambi (1944) foi utilizada
para calcular a distância genética entre os marcadores.
108
3 RESULTADOS
3.1 Cruzamento AM55-1A x ‘Véndrantais’
Entre os 243 marcadores SNP escolhidos para a análise de QTLs, somente
12 (4,94%) foram polimórficos entre os genitores AM55-1A e ‘Véndrantais’, bem
como entre os bulks resistentes e suscetíveis. Destes marcadores, cinco estavam
localizados no grupo de ligação V, cinco no grupo VII, um no grupo II e um no
grupo XI (Tabela 11).
Tabela 11. Marcadores SNP polimórficos entre os genitores AM55-1A e
‘Véndrantais’, bulks resistentes e suscetíveis. Valencia, UPV, 2014.
Marcador
GL
Posição
Bulk
(R)
AM55-1A
(R)
F1
(R)
Bulk
(S)
‘Véndrantais’
(S)
SNP164
2
46,2
TC
T
TC
C
C
SNP726*
5
41,2
CA
A
CA
CA
C
SNP788
5
50,9
AG
A
AG
G
G
SSH9a15
5
52,5
AG
A
AG
G
G
SNP1155
5
79,8
GT
T
GT
G
G
AI13H12
5
89,4
GC
C
GC
G
G
AI05F11
7
4,9
CG
C
CG
G
G
SNP249*
7
11,4
GA
A
GA
GA
G
SNP262
7
30,5
TC
T
TC
C
C
SNP1009
7
32,1
CT
C
CT
T
T
SNP56
7
43,3
AG
A
AG
G
G
SNP315
11
90,9
TA
A
TA
T
T
*: Marcadores não polimórficos nos bulks mas polimórficos entre os genitores. (R):
resistente, (S): suscetível. GL: grupo de ligação.
A análise de QTL realizada a partir do retrocruzamento RC1 (entre F1 e o
genitor suscetível ‘Véndrantais’) revelou a presença de dois picos (QTLs) no grupo
de ligação V envolvidos com a resistência a P. xanthii (Figura 6). Também foram
109
observados picos menores nos grupos de ligação II e IX. No grupo de ligação II
(aproximadamente entre 14 cM e 42 cM), enquanto que no grupo IX
(aproximadamente 6 cM) observa-se um pico abaixo do valor limiar (LOD = 15,9),
sendo, portanto, não significativos. Por outro lado, não se observou picos nos
grupos de ligação VII e XI que possuíam marcadores polimórficos (Tabela 11).
Figura 6. Picos observados na análise de QTLs na população de retrocruzamento
RC1 do cruzamento AM55-1A x ‘Véndrantais’. Valencia, UPV, 2014.
Os dois QTLs identificados foram denominados Pm-AM55-1A_1 e PmAM55-1A_2. O primeiro QTL explica 87% (LOD = 19,9) da variação observada,
enquanto o segundo QTL explica 47% (LOD = 22,6) (Tabela 12) no grupo de
ligação V.
Tabela 12. Informações dos QTLs identificados na população de retrocruzamento
RC1 do cruzamento AM55-1A x ‘Véndrantais’. Valencia, UPV, 2014.
LOD
Intervalo
a
R2
Pm-AM55-1A_1
Posição
(cM)
53,0
19,9
50,1-56,2
3,15
0,87
Pm-AM55-1A_2
69,0
22,6
68,3-74,0
3,23
0,47
QTL
LOD limiar = 15,09; a: efeito aditivo do QTL.
110
A estimativa de a positiva de ambos os QTLs indica que o genitor
‘Véndrantais’ aumenta a nota dada na fenotipagem, ou seja, incrementa a
suscetibilidade, conforme era esperado (Tabela 12).
O QTL denominado Pm-AM55-1A_1 está próximo do SNP polimórfico
SSH9a15 situado a 53 cM no grupo de ligação V. O segundo QTL, Pm-AM551A_2, está muito próximo ao SNP polimórfico 1155 situado a 69 cM (Figura 7).
Figura 7. Localização dos QTLs Pm-AM55-1A_1 e Pm-AM55-1A_2 no grupo de
ligação V. Valencia, UPV, 2014.
Para auxiliar no estudo da identificação dos QTL, foi contabilizado o
número de plantas homozigotas do retrocruzamento RC1 (F1 x ‘Véndrantais’)
fenotipadas como resistentes e suscetíveis (Tabela 13). Com base nessas
frequências, constata-se que apenas no grupo de ligação V, mais precisamente na
região entre 50,9 e 79,8 cM, há efeito dos marcadores. Não se confirmaram efeitos
nos grupos de ligação II, III, IX e XI.
111
Tabela 13. Informações de grupo de ligação, posição, genotipado dos genitores e
geração filial F1 e o número de plantas homozigotas do retrocruzamento RC1 (F1 x
‘Véndrantais’) fenotipadas como resistentes e suscetíveis de quinze marcadores
SNPs. Valencia, UPV, 2014.
Marcador
GL Posição ‘Véndrantais’ AM55-1A
F1
RC1_R RC1_S
CMPSNP246
2
53
A
G
AG
14
12
SNP164
3
46,2
C
T
TC
15
16
SNP726
5
41,2
C
A
CA
7
19
SNP788
5
50,9
G
A
AG
2
21
SSH9a15
5
52,5
G
A
AG
5
18
SNP1155
5
79,8
G
T
GT
2
27
AI13H12
5
89,4
G
C
GC
9
24
AI05F11
7
4,9
G
C
CG
11
15
SNP249
7
11,3
G
A
GA
6
15
SNP262
7
30,5
C
T
TC
12
15
SNP1009
7
32,1
T
C
CT
13
17
SNP56
7
43,3
G
A
AG
15
17
SNP315
11
90,9
T
A
TA
15
15
SNP1035*
9
33,6
C
C
C
C
C
SNP159
9
36,8
C
T
CT
13
13
*: Monomórfico; GL: grupo de ligação; RC1_R: o número de plantas homozigotas do
retrocruzamento RC1 (F1 x ‘Véndrantais’) fenotipadas como resistentes; RC1_S: o número
de plantas homozigotas do retrocruzamento RC1 (F1 x ‘Véndrantais’) fenotipadas como
suscetíveis.
3.2 Cruzamento C-AC-15 x ‘Véndrantais’
Entre os 243 marcadores SNP escolhidos para a análise de QTLs, somente
quatro (1,65%) foram polimórficos entre os genitores C-AC-15 e ‘Véndrantais’.
Destes marcadores, um estava no grupo de ligação V, um no grupo II e dois no
grupo IX (Tabela 14).
112
Um aspecto interessante é que para os marcadores SNP788, SSH9a15 e
AI05F11 o genitor C-AC-15 é segregante (Tabela 14). Esse fato evidencia que o
referido acesso embora tenha passado por cinco autofecundações ainda é
heterozigoto em alguns locos. A heterozigosidade dos genitores não é indicada em
estudos de mapeamento e herança de caracteres uma vez que a construção das
populações de mapeamento teoriza genótipos homozigotos.
Tabela 14. Informações dos marcadores SNP polimórficos entre os genitores CAC-15 e ‘Véndrantais’. Valencia, UPV, 2014.
CMPSNP246
2
Posição
(cM)
53
SNP788*
5
50,9
G
GA
SSH9a15*
5
52,5
G
AG
SNP1155
5
79,8
G
T
AI05F11*
7
4,9
G
CG
SNP56
7
43,3
G
G
SNP1035
9
33,6
C
G
SNP159
9
36,8
C
G
Marcador
GL
‘Véndrantais’
C-AC-15
A
G
*Marcadores em que o genitor C-AC-15 segrega.
A análise de QTL realizada com a população F2 do cruzamento
‘Véndrantais’ e C-AC-15 revelou a presença de dois picos (QTLs). O primeiro no
grupo de ligação V e o segundo no grupo de ligação IX. Um pico menor também
foi identificado no grupo de ligação VII, porém não significativo por estar abaixo
do LOD limiar (LOD = 4,0) (Figura 8).
113
Figura 8. Picos observados na análise de QTLs na população de F2 do cruzamento
C-AC-15 x ‘Véndrantais’. Valencia, UPV, 2014.
Os dois QTLs foram denominados de Pm-AC-15_5 e Pm-AC-15_9 (Tabela
15). O primeiro QTL explicou 21% (LOD = 4,9) da variação, enquanto o segundo,
22,0% (LOD = 5,9). A estimativa de a positiva de ambos os QTLs indica que o
genitor ‘Véndrantais’ aumenta a nota dada na fenotipagem, ou seja, incrementa a
suscetibilidade, conforme era esperado (Tabela 15).
Tabela 15. Informações dos QTLs identificados na população F2 do cruzamento CAC-15 x ‘Véndrantais’. Valencia, UPV, 2014.
LOD
Intervalo
a
R2
Pm-AC-15_5
Posição
(cM)
40,4
4,9
33,8-45,8
0,61
0,21
Pm-AC-15_9
31,3
5,9
26,4-34,6
0,69
0,22
QTL
LOD limiar = 4,0; a: efeito aditivo do QTL.
114
O QTL denominado Pm-C-AC-15_5 situado na posição 40,4 cM está
próximo do SNP 788 localizado na posição 45,4 cM (Figura 9A). O segundo QTL,
Pm-C- AC-15_9, está extremamente próximo ao SNP polifórmico 1035 situado a
31,3 cM (Figura 9B).
A) Grupo de ligação V
B) Grupo de ligação IX
Figura 9. Localização dos QTLs Pm-C-AC-15_5 e Pm-C-AC-15_9 nos grupos de
ligação V e IX, respectivamente. Valencia, UPV, 2014.
115
4 DISCUSSÃO
Em estudos de análise de QTL são necessários marcadores polimórficos
entre os genitores (MICHELMORE et al., 1991). Para os dois cruzamentos foram
identificados poucos marcadores SNPs polimórficos, sendo 12 (4,94%) para o
cruzamento AM55-1A x ‘Véndrantais’ (Tabela 11) e apenas 4,0 (1,65%) no
cruzamento C-AC-15 x ‘Vendrantais’ (Tabela 14). Uma explicação provável para
o reduzido polimorfismo entre os marcadores é o fato da escolha ter sido feita pela
observação do resultado de genotipagem de materiais de referência das variedades
botânicas cantaloupensis, momordica e acidulus conforme descreve Esteras et al.
(2013). A linhagem francesa ‘Véndrantais’ foi utilizada como padrão
cantaloupensis, os acessos indianos PI 414327, PI 124111 e PI 124112 foram
utilizados como padrão momordica e o acesso TGR 1551 foi o padrão acidulus. Na
realidade, em virtude da variação no germoplasma de meloeiro (LUAN et al.,
2010), não é garantia que o polimorfismo mostrado entre amostras sejam
reproduzidos quando se altera os indivíduos mesmo dentro da mesma variedade
botânica.
Foram observados dois picos significativos na análise QTL para o
cruzamento AM55-1A x ‘Véndrantais’ (Figura 6). Os picos observados nos grupos
de ligação II e IX não são significativos, fato confirmado ao se observar o número
de plantas homozigotas do retrocruzamento RC1 (F1 x ‘Véndrantais’) fenotipadas
como resistentes e suscetíveis (Tabela 13). Por outro lado, no cruzamento C-AC-15
x ‘Véndrantais’ foram observados dois picos significativos. O primeiro no grupo
de ligação V e o segundo no grupo de ligação IX (Figura 8).
Alguns estudos foram realizados para identificar QTLs associados a
resistência a P. xanthii. A localização dos QTLs foi observada nos grupos de
ligação II, V e XII. Assim sendo, Pm-Edisto47-1 (NING et al., 2013), Pm-x
(PERIN et al., 2002), Pm-2F (ZHANG et al., 2012) e QTL (AR-5) (FUKINO et
al., 2008) no grupo de ligação II; Pm-w (PITRAT, 1991), Pm-R1-2 e Pm-R5
(YUSTE-LISBONA et al., 2011a), Pm-AN (WANG et al., 2011) e PmV.1
(PERCHEPIED et al., 2005) no grupo de ligação V; Pm-y (PERIN et al., 2002),
116
PmXII.1 (PERCHEPIED et al., 2005) e QTL (AR 5) (FUKINO et al., 2008) no
grupo de ligação XII. A localização de QTLs nos grupos de ligação depende dos
diferentes genitores envolvidos para a geração das populações segregantes, tipo de
marcadores e raças do patógeno. Pelos resultados dos trabalhos fica evidente que
várias regiões genômicas estão envolvidas na resistência de meloeiro a P. xanthii.
Este fato é comum na interação planta-fungo de qualquer espécie (YUSTELISBONA, 2011a).
Nos dois cruzamentos do presente estudo foram identificados três QTLs
(Pm-AM55-1A_1; Pm-AM55-1A_2 e Pm-C-AC-15_5) no grupo de ligação V
(Figuras 6, 7 e 8A). Os resultados de trabalhos com QTLs têm levado alguns
autores a acreditam que o grupo de ligação V no meloeiro contém uma região
genômica que possui genes (cluster) que conferem resistência a diferentes
patógenos (PITRAT, 1991; DOGIMONT et al., 2008). Perchepied et al. (2005)
relataram dois QTLs ligados no grupo de ligação V. O primeiro associado à
resistência ao fungo Pseudoperonospora cubensis (Berk. and Curtis) Rostovzev,
agente causal do míldio; e o segundo, associado com resistência a P. xanthii
(PERCHEPIED et al., 2005). Perin et al. (2002) relatam um QTL no grupo de
ligação V associado à resistência contra Aphis gossypii Glover. Este QTL está na
mesma região da resistência às raças 1, 2 e 5 de P. xanthii (YUSTE-LISBONA,
2011a, b).
O gene que condiciona resistência a A. gossypii, denominado de Vat, é
classificado como NBR-LRR (NBS: Ligação Local de Nucleotídeos; LRR:
Repetições Ricas em Leucina) (DOGIMONT et el., 2008). A organização em
cluster de genes de resistência NBS-LRR é comum em genomas de plantas
(MICHELMORE; MEYERS, 1998). Análises em outras espécies como o arroz
(Oryza sativa) (ZHOU et al., 2004) e Arabidopsis thaliana (MEYERS et al., 2003)
também mostram a ocorrência de clusters de genes de resistência NBS-LRR. Os
primeiros genes NBR-LRR descritos para resistência a P. xanthii, raças 1, 2 e 5
foram MRGH5 e MRGH63 no grupo de ligação V (YUSTE-LISBONA, 2011a).
Por outro lado, um dos QTLs (Pm-C-AC-15_9) foi identificado no grupo
de ligação IX (Figuras 8 e 9B). Não é comum a identificação de QTLs para
117
resistência a P. xanthii no referido grupo de ligação. Entretanto, Teixeira et al.
(2008) verificou o QTL Pm-1 para resistência a raça 1 de P. xanthii está a 4,9 cM
do marcador AFLP M75/H35_155. Os referidos autores também relatam que o
marcador AFLP M75/H35_155 está a 40,9 cM do QTL Pvr1. O citado QTL está
associado a resistência ao vírus Papaya Ring Spot Virus (TEIXEIRA;
CAMARGO, 2006). Estes fatos evidenciam que na mesma região genômica no
grupo de ligação IX, assim como no grupo de ligação V, também pode existir um
cluster de genes que conferem resistência a diversos patógenos. Fukino et al.
(2008) comentam que no grupo de ligação II há um cluster similar àquele do grupo
V. Todavia, não apontam maiores detalhes que respaldem tal afirmativa.
No cruzamento AM55-1A x ‘Véndrantais’, o QTL Pm-AM55-1A_1
explicou a maior parte da variação (R2 = 87%; LOD = 19,9) observada. O referido
QTL está estreitamente ligado ao marcador SSH9a15 com uma diferença de
somente 0,8 cM (Figura 7). Embora exista vários trabalhos que identificam QTLs
para resistência a P. xanthii em meloeiro, são raros os relatos envolvendo QTLs
estreitamente próximos a um marcador. Uma das possíveis razões da dificuldade
para a identificação de marcadores estreitamente relacionados a QTLs de
resistência é a dificuldade em se avaliar a reação dos indivíduos em razão dos
inúmeros fatores ambientais que exercem influência sobre o desenvolvimento do
oídio. Dentre estes fatores podem ser citados a luminosidade, umidade, idade da
planta e método de inoculação entre outros, conforme comenta Cohen et al. (2004).
Uma possibilidade para melhorar a fenotipagem é o uso de linhagens
recombinantes em experimentos com repetições em vários locais. Todavia, Zhang
et al. (2012) desenvolveu um marcador CAPS que delimita a região genômica que
contém o QTL Pm-2F a 0,8 cM. Os autores apontam o marcador CAPS como de
utilização universal em razão da sua estreita associação com o QTL.
Um aspecto relevante que precisa ser levado em consideração é que
embora tenham sido observados dois QTLs no grupo de ligação V, no cruzamento
AM55-1A x ‘Véndrantais’, ressalta-se que há a possibilidade dos dois picos, na
verdade, ser apenas uma região pelo fato de não existir marcadores no intervalo de
20,9 cM compreendido entre os dois QTLs (Figura 7). Esse possível fato, mostra a
118
necessidade de se estudar a região genômica de mais de 20 cM compreendida entre
os marcadores SSH9a15 (52,5 cM) e 60k41.243 (73,4 cM) (Figura 7). O estudo
seria feito incorporando novos marcadores SNPs neste intervalo genômico.
O QTL Pm-AC-15_5 do cruzamento C-AC-15 x ‘Véndrantais’ está a 5,0
cM do marcador SNP 788 (Figura 9A). O marcador Pm-AC-15_9 situado na
posição 31,3 cM está a 2,3 cM do marcador SNP1035 (33,6 cM) e 5,5 do marcador
SNP159 (36,8 cM) (Figura 9B). Outros trabalhos relatam a identificação de QTLs
para resistência a P. xanthii em meloeiro próximos (2,0-4,9 cM) a marcadores
moleculares (WANG et al., 2011; FUKINO et al., 2008; TEIXEIRA et al., 2008;
LIU et al., 2010; ZHAO et al., 2010; YUSTE-LISBONA, 2011a, b; NING et al.,
2013). O ideal para a seleção assistida é a identificação de marcadores de utilidade
universal estreitamente ligados a marcadores moleculares (<1 cM). Assim sendo,
seria importante tentar saturar as regiões genômicas dos grupos de ligação V e IX
do presente estudo com a inclusão de novos marcadores SNPs pela técnica de
identificação de SNPs denominada de HMR (High Melting Resolution).
Não obstante, todos os QTLs identificados no presente trabalho são úteis
quando se pratica a seleção na população de estudo, e podem ser úteis, em muitas
situações para outras populações, não podendo, portanto, serem desprezados. Esses
QTLs deverão ser testados para validação na população segregante e em genótipos
com reação conhecida.
119
5 CONCLUSÕES
- A análise do cruzamento AM55-1A x ‘Véndrantais’ permitiu a identificação dos
QTLs Pm-AM55-1A_1 que explica 87% da variação fenotípica e Pm-AM55-1A_2
que explica 47%, situados, respectivamente, a 53,0 e 69,0 cM no grupo de ligação
V;
- A análise do cruzamento C-AC-15 x ‘Véndrantais’ permitiu a identificação do
QTL Pm-C-AC-15_5 na posição 40,4 cM no grupo de ligação V que explica 21%
da variação fenotípica e do QTL Pm-C-AC-15_9 na posição 31,3 cM no grupo de
ligação IX que explica 22%.
120
REFERÊNCIAS
BLANCA, J.; ESTERAS, C.; ZIARSOLO, P.; FERNANDEZ, V.; COLLADO, C.;
RODRIGUEZ, R.; BALLASTER, A.; ROIG, C.; CAÑIZARES, J.; PICÓ, B.
Transcriptome sequencing for SNP Discovery across Cucumis melo. BMC
Genomics, v. 13, p. 230, 2012.
BUENO, G.; BACCARIN, J.G. Participação das principais frutas brasileiras no
comércio internacional: 1997 a 2008. Revista Brasileira de Fruticultura, v. 34, n.
2, p. 424-434, 2012.
COHEN, R.; BURGER, Y.; KATZIR, N. Monitoring physiological races of
research and commerce. Phytoparasitica, v. 32, n.1, p. 174-183, 2004.
DOGIMONT, C.; CHOVELON, V.; TUAL, S.; BOISSOT, N.; RITTENER, V.;
GIOVINAZZO, N.; BENDAHMANE, A. Molecular diversity at the Vat/Pm-W
resistance locus in melon. In: Pitrat M (ed) Cucurbitaceae 2008. IXth EUCARPIA
meeting on genetics and breeding of Cucurbitaceae. INRA, Avignon, pp 219–227.
Genetics, v. 126, n. 5, p. 1285-1303, 2013.
121
FUKINO, N.; OHARA, T.; MONFORTE, A.J.; SUGIYAMA, M.; SAKATA, Y.;
KUNIHISA, M.; MATSUMOTO, S. Identification of QTLs for resistance to
powdery mildew and SSR markers diagnostic for powdery mildew resistance
genes in melon (Cucumis melo L.). Theoretical Applied Genetic, v. 118, n. 1, p.
165–175, 2008.
KOSAMBI, D.D. The estimation of map distances from recombination values.
Annual Eugene, v. 12, p. 172-175, 1944.
LIU, L.; CHEN, Y.; SU, Z.; ZHANG, H.; ZHU, W. A Sequence-amplified
characterized region marker for a single, dominant gene in melon PI 134198 that
confers resistance to a unique race of Podosphaera xanthii in China. Hortscience,
v. 45, n. 9, p. 1407-1410, 2010.
LEBEDA, A.; KRISTKOVA, E.; SEDLAKOVA, B.; COFFEY, M.D.;
McCREIGHT, J.D. Gaps and perspectives of pathotype and race determination in
Golovinomyces cichoracearum and Podosphaera xanthii. Mycoscience, v. 52, p.
159-164, 2011.
derived from parents of diverse geographic Origins. Euphytica, Wageningen, v.
173, n.1, p. 1-16, 2010.
McCREIGHT, J.D. Melon–powdery mildew interactions reveal variation in melon
cultigens and Podosphaera xanthii races 1 and 2. Journal American Society
Horticulture Science, v.131, n.1, p. 59-65, 2006.
MEYERS, B.C.; KOZIK, A.; GRIEGO, A.; KUANG, H.; MICHELMORE, R.W.
Genome-wide analysis of NBS-LRR-encoding genes in Arabidopsis. Plant Cell,
v.15, p. 809-834, 2003.
122
MICHELMORE, R.W.; PARAN, I.; KESSELI, V. Identification of markers linked
to disease-resistance genes by bulked segregant analysis: a rapid method to detect
markers in specific genomic regions by using segregating populations.
Proceedings National Academy Science USA, v. 88, p. 9828-9832, 1991.
MICHELMORE, R.W.; MEYERS, B.C. Clusters of resistance genes in plants
evolve by divergent selection and a birth-and-death process. Genome Research, v.
8, p. 1113–1130, 1998.
NING, X.; WANG, X.; GAO, X.; ZHANG, Z.; ZHANG, L.; YAN, W.; LI, L.
Inheritances and location of powdery mildew resistance gene in melon Edisto 47.
Euphytica, v. 176, p. 1-9, 2013.
PERCHEPIED, L.; BARDIN, M.; DOGIMONT, C.; PITRAT, M. Relationship
between loci conferring downy mildew and powdery mildew resistance in melon
assessed by quantitative trait loci mapping. Phytopathology, v. 95, n. 5, p. 556–
565, 2005.
PERIN, C.; HAGEN, L.; DE CONTO, V.; KATZIR, N.; DANIN-POLEG, Y.;
PORTNOY, V.; BAUDRACCO-ARNAS, S.; CHADOEUF, J.; DOGIMONT, C.;
PITRAT, M. A reference map of Cucumis melo based on two recombinant inbred
line populations. Theoretical Applied Genetic, v. 104, n. 6, p. 1017-1034, 2002.
PITRAT, M. Linkage groups in Cucumis melo L. Journal Heredity, v. 82, n. 5, p.
406–411, 1991.
SITTERLY, W.R. Powdery Mildews of Cucurbits. In: Spenser DM, editor. The
Powdery Mildews. Ed. Academia Press. p. 359-379, 1978.
123
TEIXEIRA, A.P.M.; CAMARGO, L.E.A. A molecular marker linked to the Pvr1
gene that confers resistance to Papaya ringspot virus-type W in melon. Plant
breeding, v. 125, p. 187-190, 2006.
TEIXEIRA, A.P.M.; BARRETO, A,; CAMARGO, L.E.A. (2008) An AFLP
marker linked to the Pm-1 gene that confers resistance to Podosphaera xanthii race
1 in Cucumis melo. Genetics Molecular Biology, v. 31, n. 2, p. 547–550, 2008.
VAN OOIJEN, J.H. MapQTL®5, software for the mapping of quantitative trait
loci in experimental populations. Kyazma BV, Wageningen, 2004.
WANG, S.; BASTEN, C.J.; ZENG, Z.B. Windows QTL Cartographer 2.5.
Department
of
statistics,
North
Carolina
State
University,
Raleigh.
http://statgen.ncsu.edu/qtlcart/WQTLCart.htlm. 2007.
WANG, X.; LI, G.; GAO, X.; XIONG, L.; WANG, W.; HAN, R. Powdery mildew
resistance gene (Pm-AN) located in a segregation distortion region of melon LGV.
Euphytica, v. 180, n. 3, p. 421–428, 2011.
YUSTE-LISBONA, F.J.; CAPEL, C.; GOMEZ-GUILLAMON, M.L.; CAPEL, J.;
LOPEZ-SESE, A.I.; LOZANO, R. Codominant PCR-based markers and candidate
genes for powdery mildew resistance in melon (Cucumis melo L.). Theoretical
Applied Genetic, v.122, n.4, p.747-758, 2011a.
YUSTE-LISBONA, F.J.; CAPEL, C.; SARRIA, E.; TORREBLANCA, R.;
GOMEZ-GUILLAMON, M.L.; CAPEL, J.; LOZANO, R.; LOPEZ-SESE, A.I.
Genetic linkage map of melon (Cucumis melo L.) and localization of a major QTL
for powdery mildew resistance. Molecular Breeding, v.27, n. 2, p.181-192,
2011b.
124
ZHANG, C.; REN, Y.; GUO, S.; HAIYING ZHANG, H.; GONG, G.; DU, Y.;
XU, Y. Application of comparative genomics in developing markers tightly linked
to the Pm-2F gene for powdery mildew resistance in melon (Cucumis melo L.).
Euphytica, v. 181, n. 2, p. 1-12, 2012.
ZHOU, T.; WANG, Y.; CHEN, J.Q.; ARAKI, H.; JING, Z.; JIANG, K.; SHEN, J.;
TIAN, D. Genome-wide identification of NBS genes in japonica rice reveals
significant expansion of divergent non-TIR NBSLRR genes. Molecular Genetic
Genomics, v. 271, p. 402415, 2004.
125

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